『壹』 蛋白等电点怎么知道，比如是13左右，是选强阳离子交换柱吗
这个等电点挺高的，弱阳就行，太强容易使蛋白变性。
『贰』 蛋白质、核酸等生物大分子为何能用离子交换色谱分离
因为他们来都带电荷啊，因为源你柱子上有相反的离子啊，他们可以通过离子键相互作用啊！
同时的柱子有孔径啊，可以将小的直接溜走，没有机会结合啊
可以让大的下来的更慢啊！
你满意不！
『叁』 在生化血清γ-球蛋白的分离纯化实验中，如果用阳离子交换柱，该怎么操作
缓冲液改成酸性的 而且要根据不同的pI进行
『肆』 设计一个ph稳定范围已知的蛋白分离纯化实验，利用那个类型的离子交换柱
如果不限定纯化方法，可以考虑亲和层析或离子交换，但根据你问题的意思，是选定内离子交换。容
此时就要考虑你蛋白的等电点了，如果等电点在你稳定pH之上，就用阳离子交换柱：
设计阳离子交换层析：将你的样品置换到你所指的稳定pH的running buffer。同时装柱，平衡，然后上样，平衡，洗脱（因为你的pH不稳定，建议盐洗脱），收峰。得你的蛋白；
如果你的等电点在稳定pH之下，就用阴离子交换柱，其步骤如上，只是改变柱子类型。
『伍』 如果一个蛋白质只是在PH6-6.5范围内稳定，请设计一个通过离子交换层析纯化该蛋白质的实验
你是不是说混淆了，到底是等电点在pH6-6.5？还是等电点未知，确在6-6.5稳定？
我就先按等电点来理解，回答你的问题。
如果对蛋白纯化的浓度要求不高，或者待纯化样品成分简单，杂蛋白少，就选一种离子交换层析，即阳离子离子交换层析（running buffer 设pH5.0比较合适）或阴离子交换层析（running buffer 设pH7.5比较合适）。
如果杂蛋白多，就用两步离子交换层析，即结合阴阳离子交换层析。一般建议先做阳离子交换层析（这样第一步可去掉核酸之类的）。不知你要多具体的步骤，先写个大致步骤吧：
1，阳离子交换层析：将你的样品置换到pH5.0的running buffer（一般醋酸钠buffer）。同时装住，平衡啥的，然后上样，平衡，洗脱（升pH或盐洗脱），收峰。这步就去掉等电点在6之下的大部分杂蛋白；
2，阴离子交换层析：将所收蛋白置换buffer至pH7.5的running buffer（PB），同时装住，平衡啥的，然后上样，平衡，洗脱（降pH或盐洗脱），收峰。去掉pH6.5之上的大部分杂蛋白。
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如果你确实所指在6-6.5稳定，那就看你蛋白的等电点在多少了，只好选一种离子交换层析，在6.5之上就试试pH6.0的running buffer做阳离子交换层析，在6.0之下，就试试pH6.5的running buffer做阴离子交换层析。
若有疑问，欢迎继续讨论，纯属手打，欢迎采纳，祝新年愉快！
『陆』 建立离子交换法纯化蛋白质的方法需要摸索哪些条件
pH值，缓冲液的pH值对于蛋白结合离子交换层析有非常大的影响，需要先摸索出合适的版pH值，既能权保证蛋白结合上离子交换层析，又不会出现不稳定沉淀的情况。
盐浓度，盐浓度是离子交换层析洗脱的关键，需要摸索出蛋白能在什么样的盐浓度下被洗脱，且洗脱后纯度能够达到最初的要求。
柱体积，尽管各种离子交换层析均有理论结合蛋白量，但各种蛋白情况不一样，需要摸索出能够完全结合目的蛋白合适的柱体积。既不会太大造成洗脱浓度过稀，也不会太小造成目标蛋白过载。
温度，温度可能会造成蛋白变性等等。
『柒』 怎样判断蛋白用阴离子柱还是阳离子柱
离子色谱柱由于孔径和填料的关系，不能用来分离蛋白质
您的问题可能在液相色谱论坛中询问更好一点，用的应该是带氨基基团的阴离子交换柱（不是阴离子色谱柱哦）
『捌』 蛋白纯化离子交换柱一般多大体积
如果蛋白来质等电点是6.2，用DEAE柱子，应自选用8.0左右的pH值上柱子DEAE是阴离子交换柱，当环境pH高于蛋白质等电点的时候，蛋白质可以结合上阴离子柱。考虑到要稳定的结合一般选择的环境pH要高于等电点值1.5左右。同时考虑维持蛋白质的稳定，环境pH一般选择偏中性的值。