Ⅰ 如何正確的選擇pall的超濾管
你看你要截留那部抄分物質，就選擇比最小分子量小的，如果你要截留26KD的，你要的超濾管就要比26小。但兩者也要有一定的差距，比如，選擇20-25KD之間的就不合適，因為26的也可能會出去（這是由製造工藝決定的）。所以選擇20KD以下的超濾管比較合適。
Ⅱ 想問一下超濾離心管怎麼使用啊還有它能不能重復使用
可以的,先用超聲波洗干凈,再用高壓滅菌鍋滅菌後,備用即可
Ⅲ 蛋白純化過程中，超濾能除咪唑嗎
您好！可以的，但是超濾除的不是很乾凈，用分子篩干凈些。
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Ⅳ 超濾離心管 50kd能過濾抗體嗎
3KD指的是截留分子量
截留分子量（MWCO:molecular weight cutoff）是使用分子量大小表示的超濾膜的截留性能，又內稱作容切割分子量。
由於直接測定超濾膜的孔徑相當困難，所以使用已知分子量的球狀物質進行測定。如膜對被截留物質的截留率大於90%時，就用被截留物質的分子量表示膜的截留性能，稱為膜的截留分子量。實際上，所使用的物質並非絕對的球形，由於試驗條件的限制，所測定的截留率也有一定的誤差，所以截留分子量不能絕對表示膜的分離性能。也就是說3KD分子量的產品有可能透過膜也有可能被膜攔截，一般來說希望3KD的產品全部透過，需要選擇截留分子量更大的膜，比如5KD
Ⅳ 同一個超濾濃縮管可以用來純化不同的蛋白嗎
不可以的
不管是哪個公司生產超濾濃縮管使用後都會有蛋白殘留在濾膜上，而不管是使回用氯化鈉或答者氫氧化鈉清洗都不能確保可以完全清理掉殘留在膜上的蛋白。
如果不同的蛋白間混合使用，可能前一個蛋白會污染到後一個蛋白，甚至有些某些高活性的酶殘留在上面會造成後一個蛋白被酶切降解，造成不必要的損失。
Ⅵ 化學合成中的透析能用超濾管代替嗎
除蛋白中的小分子雜質,不知道選用哪種方法,透析袋... 以及蛋白損失量大(尤其不適合微量的樣本溶液),所以目前在很多實驗中都被超濾代替
Ⅶ 純化的單克隆抗體，超濾濃縮的時候會把磷酸鹽離心掉導致抗體的緩沖環境變成水嗎
不會的。。。
超濾濃縮對於緩沖液成分不會有任何改變的，因為PBS中的磷酸根離子回也好答，氯離子也好，鈉離子也好都是很小的離子，可以在溶液中自由擴散，不會因為超濾離心就被甩到下層濾液中去。
你可以做個簡單的實驗，取一定體積PBS溶液測一下pH值和電導率值，之後用超濾管去離心。取出上層未被濾完的溶液再測一下pH值和電導率值，會發現pH值和電導率值和之前測的是一樣的。即可證明未被濾完的溶液還是PBS溶液，而不是水。
Ⅷ 如何選擇超濾管
你看你要截留那部分物質，就選擇比最小分子量小的，如果你要截留26KD的，你要的超濾管內就要比26小。但兩者也要有一定容的差距，比如，選擇20-25KD之間的就不合適，因為26的也可能會出去（這是由製造工藝決定的）。所以選擇20KD以下的超濾管比較合適。
Ⅸ 離心管和離心超濾管分別是做什麼用的,這個兩個有什麼區別!
離心管就是一個簡單的可以承受高轉速壓力的管子,比如離一些樣品,分離出上清沉澱專.離心超濾管會有一個屬類似於內管和外管的兩個部分,內管中是帶有一定分子量的膜,當高速離心時,分子量比它小的就漏到下面的管子（即外管）中了,分子量比它大的就截留在上面（即內管中）,就是超濾的原理.常用於濃縮樣品.