制備肝勻漿磷酸緩沖液蒸餾水

A. 一個細胞生物學的選擇題 制備人類肝細胞勻漿液

1、封閉（緊密連接）、粘著連接
2、面內質網、 高爾基體
3、流動性 、不對稱性
4、核苷酸 、單糖
5、多能性 、單能性
6、調節途徑 、調節途徑
7、核纖層 、核纖層蛋白
8、聚合期 、穩定期
9、顯微水平、超微水平和分子水平
10、CGN和TGN

B. 就是那個用透析法純化蛋白酶用蒸餾水為什麼不對啊

你如果是高中生，並且這屬於生物題，那就是如下解釋：1，用緩沖液更能保證蛋白質的內活性，用蒸餾水容雖說沒有嚴重錯誤但對蛋白質活性的保持還是有風險的，若實驗中不小心濺進去酸或鹼，顯然緩沖液更保險。
如果是更詳細的解釋，則除了上面，還有2，合適的緩沖液可以抑制蛋白質水解，保持將ph控制在等電點附近，防止蛋白質聚沉。3，蛋白質多親水，緩沖液中離子可以防止過多水分子水合蛋白質。
至於別的緩沖液，最好還是用磷酸，原因：1，磷酸三元且弱酸，緩沖餘地更大，而且磷元素比較親生物。2，碳酸鈉，碳酸氫鈉易分解，亞硫酸根又時不時會產生有毒物質，硫代硫酸根又活潑，氫氟酸，次氯酸更不用說，常見的只有磷酸緩沖液最佳。

C. 50mmol/L磷酸緩沖液的配製書上的是0.2mol/L的.PH6-8左右.

根據相應的pH值,按照書上的配方,配製好0.2M的緩沖液.
然後4倍稀釋.即每1ml緩沖液加入3ml蒸餾水.

D. 如何配製50mM磷酸鈉緩沖液（pH7.0）

基本不用ph=pka+lg[c(磷酸鈉）/c(磷酸氫二鈉)]這個公式了。

A液：取NaH2PO4.2H2O 3.12g溶於蒸餾水，定溶至100ml。 B液：取Na2HPO4.12H2O 7.17g溶於蒸餾水，定溶100ml。

這樣得到的是200mM的磷酸鈉緩沖液。而A液與B液以39：61的比例混合，得到PH值為7.0的溶液。

但濃度還是200mM。所以得到的100ml稀釋成400ml。如果沒法定溶到400ml。可以計算一個可以定溶的體積，比如1L。

總共是50mmol（0.05Mol）試劑，NaH2PO4.2H2O佔39%得0.05*0.39*分子量。同樣可以算出Na2HPO4.12H2O（0.05*0.61*分子量）要的量。

(4)制備肝勻漿磷酸緩沖液蒸餾水擴展閱讀：

1、按標准配製即可；（取磷酸氫二鈉10.9g，磷酸二氫鈉2.3g，加水700ml使溶解，調pH值至7.0，再加水稀釋至1000ml。）

2、磷酸氫二鈉和磷酸二氫鈉在葯典附錄試葯中有規定，通常情況下沒指明帶幾個水的，均是指下列形式：

A、磷酸氫二鈉：Disodium Hydrogen Phosphate (Na2HPO4·12H2O＝358.14]本品為白色結晶或顆粒狀粉末，易風化。在水中溶解，在乙醇中不溶。

B、磷酸二氫鈉：Sodium Dihydrogen Phosphate [NaH2PO4·H2O＝137.99]本品為白色結晶或顆粒。在水中易溶，在乙醇中幾乎不溶。

E. 磷酸緩沖液（pH8.04)的配製；分光光度法的原理

分光光度法是通過測定被測物質在特定波長處或一定波長范圍內的光吸收度，對該物質進行定性和定量分析的方法。

1. 基本原理

單色光輻射穿過被測物質溶液時，被該物質吸收的量與該物質的濃度和液層的厚度（光路長度）成正比，即朗伯 - 比爾定律，這是吸收光譜法定量的理論依據，其關系式如式 3-1 ：

A = ECL 式 (3-1)

式中 A 為吸收度 ； E 為吸收系數，即單位濃度、單位液層厚度的吸收度數值； C 為溶液濃度； L 為液層厚度。

紫外 - 可見分光光度法是根據物質分子對波長為 200~760nm 這一范圍的電磁波的吸收特性所建立的光譜分析方法。《中國葯典》 (2005 年版 ) 有 10 種葯材用該法進行葯材的有效性評價。其主要特點為：靈敏度高，可達 10 -4 g/ml ~10 -7 g/ml ；准確度高，相對誤差為 2 ％ ~5 ％。中葯中有紫外吸收的成分或本身有顏色的成分，在一定的濃度范圍內，其溶液的吸收度與濃度符合朗伯 - 比爾定律，均可用此法進行分析。本法適於大類成分的含量測定，如總黃酮、總蒽醌、總生物鹼等。

2. 定量測定法

測定時，應以配製供試品溶液的同批溶劑為空白對照，採用 1cm 的石英吸收池，在選（規）定的吸收峰波長 ±2nm 以內測試幾個點的吸光度，或由儀器在選定波長附近自動掃描測定，以吸光度最大的波長作為測定波長。一般供試品溶液的吸光度讀數，以在 0.3 ～ 0.7 之間的誤差較小。當溶液的 pH 值對測得結果有影響時，應將供試品溶液和對照品溶液的 pH 值調成一致。

用於含量測定的方法一般有以下幾種。

(1) 對照品比較法 凡溶液中待測物質吸收符合朗伯 - 比爾定律，則分別配製供試品溶液和對照品溶液，對照品溶液中所含被測成分的量應為供試品溶液中被測成分標示量的 100 ％ ±10 ％，所用溶劑也應完全一致，在該物質的最大波長下測定供試品溶液和對照品溶液的吸光度後，按式 3-3 計算供試品中被測溶液的濃度：

C x ＝ ( A x ／ A R ) C R 式 (3-2)

含量＝ ( C x × D ) / W ×100 式 (3-3)

式中 C x 為供試品溶液的濃度； A x 為供試品溶液的吸光度； C R 為對照品溶液的濃度； A R 為對照品溶液的吸光度； D 為稀釋倍數； W 為供試品取樣量。

（ 2 ）吸收系數法 先測出對照品在 λ max 下的吸光度，然後求得吸收系數；也可從有關手冊或葯典中查得有關化合物的吸收系數。採用與對照品相同的溶劑，配製供試品溶液，在相同的波長處測定其吸光度，求出吸收系數，計算含量。

含量％＝ [( ) x /( ) R ]×100% 式 (3-4)

式中， ( ) x 為供試品的百分吸收系數； ( ) R 為對照品的百分吸收系數。

用本法測定時，應注意儀器的校正和檢定。

（ 3 ）標准曲線法 從待測物質的吸收光譜圖上選定某一最大吸收波長，用一系列不同濃度的標准溶液在該波長處分別測得它們的吸光度，用吸光度對濃度作圖。若待測物質對光的吸收符合朗伯 - 比爾定律，應得到一條通過原點的直線，即標准曲線。在同樣條件下測定樣品溶液的吸光度，在標准曲線上可讀出樣品溶液的濃度。

F. 磷酸緩沖液配製方法

【配製方法】如下:

0.2M磷酸緩沖液

磷酸緩沖液PH5.7--8.0(0.2M)

甲液：

NaH2PO4·2H2O：Mr=156.03，0.2mol/L溶液為31.21g/L，

NaH2PO4·H2O：Mr=138.01，0.2mol/L溶液為27.6g/L。

乙液：

Na2HPO4·2H2O：Mr=178.05，0.2mol/L溶液為35.61g/L，

Na2HPO4·7H2O：Mr=268.13，0.2mol/L溶液為53.624 g/L ，

Na2HPO4·12H2O：Mr=358.22，0.2mol/L溶液為71.64g/L。

磷酸緩沖液PH5.7--8.0(0.2M)

PH 甲液X(ml) 乙液Y(ml) PH 甲液X(ml) 乙液Y(ml)

5.7 93.5 6.5 6.9 45 55

5.8 92 8 7 39 61

5.9 90 10 7.1 33 67

6 87.7 12.3 7.2 28 72

6.1 85 15 7.3 23 77

6.2 81.5 18.5 7.4 19 81

6.3 77.5 22.5 7.5 16 84

6.4 73.5 26.5 7.6 13 87

6.5 68.5 31.5 7.7 10.5 89.5

6.6 62.5 37.5 7.8 8.5 91.5

6.7 56.5 43.5 7.9 7 93

6.8 51 49 8 5.3 94.7

根據要求的PH值,取X毫升甲液與Y毫升乙液,混合均勻即得.

1/15M 磷酸緩沖液

磷酸緩沖液PH4.49--9.18(1/15M)

PH 甲液X(ml) 乙液Y(ml) PH 甲液X(ml) 乙液Y(ml)

4.4 90 10 6.98 64

4.9 40.1 9.9 7.71 7 3

5.29 0.25 9.75 7.58 8 2

5.59 0.5 9.5 7.75 9 1

5.91 19 8.04 9.5 0.5

6.24 2 8 8.2 9.7 0.3

6.47 3 7 8.54 9.75 0.25

6.64 4 6 8.68 9.9 0.1

6.81 5 5 9.18 10 0

乙液：一水磷酸二氫鈉,1/15M溶液含9.2g/L

甲液：二水磷酸氫二鈉,1/15M溶液含11.864g/L

根據要求的PH值,取X毫升甲液與Y毫升乙液,混合均勻即得.

【磷酸緩沖液簡介】

磷酸緩沖液（PB，Phosphate Buffer），是生物化學研究中使用最為廣泛的一種緩沖液，通常使用的有磷酸鈉緩沖液（NaH2PO4&Na2HPO4）和磷酸鉀緩沖液（K2HPO4&KH2PO4)，由於它們有二級解離，緩沖的pH值范圍很廣。

G. 10肝組織勻漿制備方法

方法採用密度梯度離心、貼壁培養法分離培養大鼠MSCs，以10%損傷肝組織勻 ... 1.4 損傷肝組織勻漿的制備. 6～8 周齡SD健康大鼠10隻，體重180～200 g，

希望採納

H. 肝勻漿緩沖液的選擇

適宜濃度的NaHCO3

I. 酶試劑為什麼要用磷酸緩沖液配製，用蒸餾水是否可以，為什麼

1,是為了使沒發揮更好的活性,
2,不可以用蒸餾水,因為蒸餾水的PH不等於7.會令酶降低活性!
滿意望採納。
不滿意可以追問。