① 稀釋50*TAE溶液到1*TAE是用蒸餾水還是一般的水
做膠的TAE當然用雙蒸水
如果是槽中使用的電泳緩沖液，單蒸水也可以
② 剃度稀釋都用蒸餾水還是用溶解溶劑
做膠的TAE當然用雙蒸水
如果是槽中使用的電泳緩沖液,單蒸水也可以
③ TAE緩沖液 配方
你好，我看了你的推斷過程，有一個地方有誤：Tris-乙酸不代表Tris與乙酸的比例是一專比一，實際上配TAE時，根據屬所需的pH值，Tris與乙酸比例是2：1的。所以1X ：0.04mol/l Tris-乙酸=0.04mol/LTris鹼以及0.02mol/L乙酸，相應地你就能算出是57.1ml冰乙酸了。
另外，你發現沒有，按照你的1X的配方EDTA是0.001mol/L,那麼乘以50為0.05mol/L，而50×配方中是0.1mol/L。這兩種配方都是正確的：分子克隆附錄上面取的是0.05mol/L，takara的技術手冊上用的是0.1mol/L，這個影響不大，主要是鰲合Mg，抑制DNase活性。
希望能夠幫到你，有問題繼續交流！
④ 50×TAE緩沖液配方
你好，我看了你的推斷過程，有一個地方有誤：Tris-乙酸不代表Tris與乙酸的比例是一比一，回實際上配TAE時，根據所需的答pH值，Tris與乙酸比例是2：1的。所以1X ：0.04mol/l Tris-乙酸=0.04mol/LTris鹼以及0.02mol/L乙酸，相應地你就能算出是57.1ml冰乙酸了。
另外，你發現沒有，按照你的1X的配方EDTA是0.001mol/L,那麼乘以50為0.05mol/L，而50×配方中是0.1mol/L。這兩種配方都是正確的：分子克隆附錄上面取的是0.05mol/L，takara的技術手冊上用的是0.1mol/L，這個影響不大，主要是鰲合Mg，抑制DNase活性。
希望能夠幫到你，有問題繼續交流！
⑤ TAE緩沖液
按照
242g Tris鹼
57.1ml冰乙酸
100ml 0.5mol/L EDTA（pH8.0）
是配置1L 50x的緩沖液
使用的時候取決於你的容回器有多大，一般用一個答2L的試劑瓶的話，就是40ml儲存液+水補滿到2L，然後拚命混勻就可以倒進電泳槽作電泳緩沖液或者配置agarose TAE膠了
⑥ 配置瓊脂糖膠時,可以用蒸餾水和高濃度的TAE液嗎
1.用蒸餾水將制膠工具洗干凈 准備好制膠平板 用瓊脂將模具邊緣封閉 架好梳回子
2.根據要分離的答樣品（DNA）大小配製合適濃度的瓊脂凝膠 准確的稱取一定量的瓊脂糖乾粉 加入到合適體積的錐形瓶中 加入一定量的電泳緩沖液（30ml左右TAE） 放入到微波爐內加熱融化 冷卻片刻（不燙手即可）
3.融化後的瓊脂溶液搖晃混勻 倒入電泳槽中 等其凝固
4.室溫下凝固30-40min左右 小心的拔出梳子 取出凝固好的凝膠放入電泳槽內 准備上樣
5.在電泳槽中倒入電泳緩沖液（TAE）沒過膠面1mm左右 去除膠孔內的氣泡
6.上樣 5ulDNA樣品加入1ul上樣緩沖液（loading buffer）和1ul的染料 用搶混勻後加入到凝膠孔內
.上樣結束 接通電源 紅色正極 黑色負極 DNA樣品有負極往正極運動 加樣孔側為負 40-50v電壓 電壓30敏左右即可（< 40min）
8.電壓結束 關閉電源 凝膠成像儀上觀察電壓位置並比對marker判斷大小
⑦ 關於電泳緩沖液TAE配製的幾個問題
按照說明上的量配的，一般問題不大，用精密pH試紙就可以。
完全可以的，只要使用前沒有沉澱就可以。
一般不需要滅菌，因為就是用於電泳嗎，甚至可以反復使用，隔一段時間換一次即可。
⑧ 10×Tris-乙酸（TAE）緩沖液配製方法
1.
稱量Tris
48.4g，Na2EDTA·2H2O
7.44g
於1L燒杯中；
2.向燒杯中加入約800ml去離子水，充分攪拌溶解；
3加入11.4ml的冰醋酸回，充分攪拌；
4.用去答離子水定容至1L後，室溫保存，待用。
⑨ 50倍的TAE緩沖液的配製
稱下列試劑，1L燒杯
tris 242g
Na2EDTA.2H2O 37.2g
然後加入800ml的去離子水，充回分攪拌溶解。答
加入57.1ml的醋酸，充分混勻。
加去離子水定容至1L，室溫保存。
需要使用的時候，稀釋為1*的，
例如：需要使用200ml的1*TAE，則量4ml的50*TAE，196ml的去離子水，混勻即可。
⑩ 如何配製2%瓊脂糖溶液
秤一克瓊脂糖，加100毫升蒸餾水。
但是，一般跑電泳的時候，需要加tae緩沖液，50×tae加2毫升，再加98毫升蒸餾水。
配瓊脂糖，差一兩毫升沒什麼影響的，我們實驗室用的是百分之二的。