50tae蒸馏水

Ⅰ 如何用微量移液器量取50微升的蒸馏水

实验步骤 1、轻轻转动微量移液器的调节轮，使读数显示为所要取液体的体积。 2、把白套筒顶端插入吸头，在轻轻用力下压的同时，把手中的移液器按逆时针方向旋转一下。 （切记力不能过猛，更不能采取剁吸头的方法来进行安装，因为那样做会对您手中的移液器 造成不必要的损伤。 P1000 使用蓝色微量移液器头， P200 及 P20 使用黄色微量移液器头。 ） 3、轻轻按下推动按钮，推到第一档。 4、手握移液器，将吸液尖垂直浸入蒸馏水中，浸入深度为 2~4mm。 5、经 2~3s 后缓慢松开推动按钮，即从第一挡还原。 第一次我们用量程为 P1000 的微量吸移器分别量取 1000?L,500?L., 200?L 蒸馏水， 每组 量取三次。 第二次我们用 P20 分别量取 20?L, 10?L, 5?L 蒸馏水,每组量取三次。 第三次我们用P200 的微量吸移器分别量取 200?L, 100?L, 50? 蒸馏水，每组量取三次。 6、将微量移液器垂直放在天枰上，按动推动按钮到第一挡，液体泄出，再继续按动推动按钮到 第二挡，使吸液尖末端残留液体完全泄出，放松按钮，使推动按钮复原。 7、观察电子天枰，并记录数值。 分别为： 量程为 P1000 的微量吸液器的 1000?L, 500?L., 200?L.蒸馏水。 量程为 P20 的微量吸液器的 20?L, 10?L, 5?L 蒸馏水。 量程为 P200 的微量吸液器的 200?L, 100?L, 50?L 蒸馏水。 8，每次用天枰读取数值后要清零。 9，每次完成测取数值后，要把防水膜中的取出，放到收容器中。 10，按下吸液管活塞下侧的按钮，将尖端管退到垃圾桶中。 五、实验结果 * 在 25 摄氏度下，一毫升液态水的重量为一克。体积=质量/密度 由于在本次实验中，所 称量的液体（蒸馏水）的密度为 1。所以体积=质量。我们就可以通过电子天枰，测出所求液 体的质量， 求出液体的体积。 并通过测出的质量和微量移液器取出的体积， 可以 算出误差值。 * 横轴：微量移液器的种类以及实验的次数、所称取的数值 * 纵轴：所称蒸馏水的量 实验 1 1000p 1000?L. 500?L. 200?L. 误差率：<=0.8 1 0.9900g 0.4900g 0.2100g 2 1.0000g 0.5000g 0.2000g 3 0.9900g 0.5000g 0.2100g 平均 0.9933g 0.4967g 0.2067g 误差值 -0.667% -0.660% 3.350% 实验 2 20p 20?L. 10?L. 5?L. 误差率：<=1 1 0.0180g 0.0100g 0.0050g 2 0.0200g 0.0090g 0.0050g 3 0.0190g 0.0100g 0.0050g 平均 0.0190g 0.0097g 0.0050g 误差值 -5.00% -3.00% 0% 实验三 200p 200?L. 100?L. 50?L. 误差率：<=0.8 1 0.2100g 0.1100g 0.0500g 2 0.2000g 0.1100g 0.0500g 3 0.2100g 0.0900g 0.0500g 平均 0.2067g 0.1033g 0.0500g 误差值 3.350% 3.300% 0% 实验误差： 误差值=【（平均体积-理想体积）/理想体积】X100 P1000： （0.9933-1.000）/1.000*100%=-0.667% (0.4967-0.5）/0.5*100%=-0.660% ( 0.2067-0.2）/0.2*100%=3.350% P200： (0.2067-0.20）/0.2*100%=3.350% (0.1033-0.10）/0.1*100%=3.300% (0.0500-0.05）/0.05*100%=0% P20： (0.0190-0.02）/0.02*100%=-5.00% (0.0097-0.01）/0.01*100%=-3.00% (0.005-0.005)/0.005*100%=0%

Ⅱ TAE缓冲液哪有卖

TAE缓冲液 是生物学中使用最广泛的核酸电泳缓冲液，主要用于DNA 的琼脂糖凝胶电泳。TAE缓冲液的主要成分是Tris-乙酸盐与EDTA，电泳时双链线状DNA 的迁移率较快，电泳大于13kb 的片段时分离效果好，此外，回收DNA 片段时也宜用TAE 缓冲系统进行电泳。
索莱宝的是50×TAE 缓冲液，工作浓度为1×，可直接用蒸馏水稀释50 倍后使用。若产品出现沉淀析出，请置于37℃水浴使其溶解，不影响使用。

Ⅲ DNA指纹图谱的产生的方法

2.1 主要试剂及器材
产生 DNA 指纹图谱的主要试剂及器材如下：限制性内切酶 HinfⅠ、HaeⅢ等；电泳级琼
脂糖；尼龙膜；λDNA/EcoRⅠ+HindⅢ；H4 型（24×20cm）水平电泳槽装置；Model 250 型
电泳仪；标记试剂盒 Prime-a-Gene&reg; Labeling system；（α-32P）dCTP；X 光胶片；LS5801
型液闪仪；FYY-1 型多功能生化反应仪。
2.2 有关试剂的配制
（1） ACD 抗凝剂
柠檬酸 0.48g
柠檬酸钠 1.32g
葡萄糖 1.47g
加水至 100ml
（2） T10E10 缓冲液
Tris-HCl 10mmol/dm3
EDTA 10mmol/dm3
pH 值：8.0
（3）TE 缓冲液
Tris-HCl 10mmol/dm3
EDTA 1mmol/dm3
pH 值：8.0
（4）20%SDS（100ml）
SDS 20g
溶于 100ml 蒸馏水中，30℃以上贮存。
（5）USSTE 裂解液
Urea 8mmol/dm3
NaCl 0.3mol/dm3
SDS 2%
Tris-HCl 150mmol/dm3
EDTA 1mmol/dm3
pH 值：7.5
（6）Tris 饱和酚
新蒸苯酚加入 8-羟基喹啉至终浓度为 0.1%，用 1mol/dm3 Tris-HCl 和0.5mol/dm3
Tris-HCl 溶液饱和至 pH 值 8.0，去掉上层水相，加适量（约 1/10 体积）的 0.1mol/dm3 Tris-HCl
（pH 值8.0）覆盖在酚相上，保持4℃，放在棕色瓶中保存。
（7）50×TAE 缓冲液（1 000ml）
Tris 242g
冰醋酸 57.1ml
0.5mol/dm3 EDTA（pH 值 8．0） 100ml
（8）10× BPB 贮存液
聚蔗糖 20%
EDTA 0.2mol/dm3
溴酚蓝 0.25 %
二甲基腈蓝 0.25%
本贮存液可在室温存放。
（9）40mmol/dm3 亚精胺
亚精胺 0.58g
将亚精胺溶于 10ml 蒸馏水中，4℃下存放。
（10）溴化乙锭（EtBr）贮存液 （10mg/ml）
EtBr 1g
将EtBr 溶于 100ml 蒸馏水中，在棕色瓶存放，温度保持在 4℃。
（11）变性液
NaCl 1.5mol/dm3
NaOH 0.5mol/dm3
（12）20×SSC（1 000ml）
NaCl 175.3g
柠檬酸钠 88.2g
用 10mol/dm3 NaOH 调 pH 值至 7．0，高压灭菌。
（13）杂交液
NaPO4 0.5mol/dm3
SDS 7 %
EDTA 1mmol/dm3
（14）标记反应终止液
聚葡萄糖蓝 0.9%
溴甲酚紫 0.03%
EDTA 20mmol/dm3
4℃下存放。
（15）SephadexG-50 的水化
SephadexG-50 10g
将 SephadexG-50 溶于约 300ml TE（pH 值 8．0）中，高压灭菌，4℃下存放。
（16）闪烁液（500ml）
无水乙醇 10ml
PPO 2g
PoPoP 50mg
二甲苯 490ml
室温棕色瓶存放。
2.3 操作步骤
2.3.1 基因组DNA 的提取
（1）10ml 全血与 40mlT10E10 缓冲液混匀，4 000r/min 离心10 分钟。
（2）弃上清液，在沉淀中加入 40mlT10E10 缓冲液混匀，4 000r/min 离心 10 分钟。
（3）弃上清液，在沉淀中加入 40mlTE 缓冲液混匀，4 000r/min 离心 10 分钟。
（4）弃上清液，在沉淀中加入10mlUSSTE 裂解液，混匀呈浊液，置摇床过夜，温度保持
在37℃。
（5）加入 10ml 苯酚，缓慢上下混匀至少 20 分钟，4 500r/min 离心 20 分钟。
（6）用移液枪小心地将上层水相转移到另一离心管中，吸头的尖端剪去一小段，以免在
吸取过程中损伤大分子DNA。
（7）向水相中加入等体积的酚、氯仿、异戊醇（体积比为24:23:1），缓慢上下混匀15
分钟，4 500r/min 离心20 分钟。
（8）如前述吸出水相，向水相中加入等体积的氯仿、异戊醇（23:1），上下缓慢混合10
分钟，4 500r/min 离心 20 分钟。
（9）吸出水相，向水相中加入2 倍体积的预冷（—20℃）无水乙醇，盖紧管盖，上下颠
倒即可看见白色絮状DNA。
（10）小心将絮状DNA 吸（吸头尖端剪去一小段，端部必须光滑）至1 .5ml 离心管中，加
入 1ml 70%的乙醇，来回颠倒数次离心管，10 000r/min 离心 2～5 分钟。
（11）小心地倒掉管中乙醇，将管倒置在干净的吸水纸上，以让乙醇流尽。
（12）将离心管正立，置45℃烘箱中烤20 分钟左右，以便让乙醇完全挥发掉，如有条件，
可置于真空干燥器中抽气10 分钟。
（13）取出离心管，视沉淀块的大小加入 100～200μl TE 缓冲液，置55℃水浴中过夜，以
溶解 DNA。
（14）将溶解后的 DNA 置于 4℃或—20℃下贮存。
2.3.2 基因组DNA 的酶切
（1）每样酶切反应为：
10μg DNA
1.5ml（15u） 限制性内切酶
6μl 10 倍 buffer
6μl 40mmol/dm3 亚精胺
加双蒸水至体积为60μl，用吸头混匀。
（2）37℃水浴，保持6～8 小时。
（3）取出酶切样品置于4℃下。
2.3.3 基因组DNA 酶切情况检查
（1）从每个酶切样品中取出3μl 消化液，加入3μl 2 倍BPB 混匀后点样。
（2）用 0.8%琼脂糖凝胶（内含 0.5μg/ml EtBr）和 1 倍TAE 缓冲液进行电泳，电压为60V。
（3）1 小时后，在紫外灯下检查酶切是否完全及各样品的DNA 浓度是否一致，以确保每
个样品进行电泳时上样量一致。
（4）如果发现某个样品酶切不完全，则另外加入5μl 左右的酶，在37℃条件下水浴保温6 小时。
（5）已完全酶切的样品，加入1/10 体积（6μl）的电泳上样缓冲液（10 倍BPB），混匀
后置4℃（短期）或—20℃（长期）保存。
2.3.4 大板凝胶的制备和电泳
（1）称取3.75g 琼脂糖，将其倒入一个500ml 容积的普通试剂瓶（透明度要高）中。用
蒸馏水将50 倍TAE 贮存液稀释成1 倍TAE， 量取375ml 1 倍TAE 加入瓶中， 配制的凝胶
浓度为 1.0% 。
（2）盖上瓶盖，但不能旋得太紧。将瓶放入微波炉中加热，待琼脂糖完全熔化后，溶液
是透明的。
（3）取出瓶子放在55℃的水浴箱中，约30 分钟后就能冷却至55℃。
（4）洗净并擦干制胶板（24cm ×22cm），用 2cm 左右宽的透明胶布将制胶板的两个开口
端封牢，放置在水平台面上用水平仪调平。将样品梳（ 6mm × 3mm ）插入制胶板离最近开口
端 2cm 位置。将冷却至55℃的凝胶摇匀，缓慢地倒入制胶板中央，如果有气泡出现，应用吸
头将气泡吸掉，60 分钟后，制胶板中的凝胶将完全凝固。
（5）将 50ml 50 倍 TAE 贮存液倒入电泳槽中，再加入 2 450ml 蒸馏水与其混匀，电泳槽
也应置于水平台面上。
（6）将制胶板两端的透明胶布剥离，然后将制胶板放在电泳槽的中部，小心地拔出加样
梳，以免加样孔破裂。
（7）从 4℃冰箱中取出 DNA 样品，另取两个离心管，各加入 12μl（1μg/8μl）的分子量
标志物λDNA/EcoRⅠ+Hind Ⅲ 及 1/10 体积的（1.2μl）10 倍 BPB，混匀。将 DNA 样品及
分子量标记物一起置于55℃水浴箱保温10 分钟，取出后立即置于冰水混和物中，2～3 分钟后
点样，这样可防止粘性末端之间的粘接。
（8）加样时每个样品用一个吸头，以免交叉污染。吸出样品后应迅速插入加样孔中下部，
轻轻推出样品，在两端加样孔中各点入分子量标志物。
（9）盖上电泳槽盖，插上导线，在加样后5 分钟接通电流，以留出时间使加样孔内的样
品通过扩散而均匀分布，将电压调至30V，电泳60 小时。
2.3.5 Southern 转移
（1）电泳结束后，将制胶板连同凝胶一起放在一个方形塑料盘中，倒入约350ml（浸没凝
胶）的 0.2mol/dm3HCl 处理 25 分钟，并每过约5 分钟摇动一次。
（2）倒掉稀盐酸溶液，加入蒸馏水简单地洗涤一下凝胶，然后倒掉蒸馏水，加入约350ml
的变性液浸泡30 分钟，间断性地摇动。
（3）倒掉变性液，加入350ml 0.5 倍变性液浸泡 25 分钟，间断性地摇动。
（4）将制胶板连同凝胶一起取出，将一块约28cm×19.5cm 的玻璃板盖在凝胶上，极其小
心地将制胶板倒翻过来，这时玻璃板在下，凝胶在上，轻轻地滑出制胶板，将玻璃板连同其
上的凝胶放在水平的桌面上。
（5）将一张20cm×19cm 的尼龙膜（注明样品排列方向及电泳方向）在0.5 倍变性液中浸
湿，然后对齐凝胶小片段区域的顶端将尼龙膜铺在凝胶的表面，用一根玻璃棒从膜的表面推
过以赶走膜与凝胶之间的气泡，用墙纸刀切除掉凝胶的无用部分（未被尼龙膜覆盖住的部
分）。操作时应戴上手套或用镊子。
（6）将3 张稍大于膜的滤纸（20cm×20cm）依次在 0.5 倍变性液中浸湿，放置在膜上，每
放一张滤纸后都应用玻璃棒轻轻赶走气泡。
（7）将一打（约4～5cm 厚）已裁至滤纸大小的干吸水纸放在滤纸层上，再将一块玻璃板
放在吸水纸上，然后抓紧上下两块玻璃板迅速翻转放在水平桌面上，抽去凝胶上面的玻璃板。
（8）在凝胶的四周露出的滤纸及吸水纸上放上保鲜膜，以防止凝胶上下的滤纸直接接触。
然后将 5 张稍大于凝胶的滤纸（20cm ×20cm）依次在 0.5 倍变性液中浸湿，放置在膜上，每
放一张滤纸后都应用玻璃棒轻轻赶走气泡。
（9）用一层保鲜膜将整个转移装置围盖住，以防水分蒸发，将一块玻璃板压在顶部。
（10）持续转移3～4 小时后，去掉上面的滤纸和凝胶，取下尼龙膜放在2 倍SSC 中浸泡
20 分钟，间断性摇动，然后取出放在一张干净的滤纸上，置60℃烘箱中烘30 分钟，使DNA
固定于尼龙膜上。
（11）将烤干的膜夹在两张干燥滤纸之间，置于室温下保存待用。
2.3.6 探针的标记
（1）将80ng 探针DNA（体积<30μl）倒进一个新的0.5ml 离心管中，在沸水中煮5～10
分钟，取出，插入碎冰中。
（2）然后依次在试管中加入下列成分：10μl 5 倍标记缓冲液（含随机引物），2μl BSA
（10mg/ml），2μl dATP、dGTP、dTTP 等量混合物（浓度为各 20μmol/dm3）；30μl 灭菌蒸馏
水，50μl（α-32P）dCTP（10μCi/μl，3 000Ci/mmol）（至浓度为 333nmol/dm3）；lμl Klenow
酶（3u/μl）；最后体积为 50μl。
（3）将全部试剂混匀后置37℃保温壶中保温6 小时。
（4）加入等体积（50μl）的标记反应终止液终止反应。
2.3.7 未掺入核苷酸前体的除去
（1）取一0.5ml 离心管，在管底部打一小孔，用玻璃棉塞住小孔，外套一个1.5ml 离心
管。
（2）向0.5ml 的管中加满TE 饱和的Sephadex G-50。
（3）3 000r/min 离心 5 秒钟，重新加满Sephadex G-50 后再离心，直到 Sephadex G-50
加满0.5ml 小管的3/4。
（4）将标记反应液加入 0.5ml 管中，3 000r/min 离心数秒钟。
（5）将1.5ml 管中的液体（蓝色）移入另一1.5ml 离心管中。
（6）向0.5ml 管中加入 40μl TE，3 000r/min 离心数秒钟。
（7）重复（5）、（6）步骤2～3 次，直到凝胶中的紫色即将到达0.5ml 管底部。
（8）将回收的探针置于4℃下待用。
2.3.8 探针放射性强度的测定
（1）取两个液闪瓶，各加2ml 闪烁液。
（2）在其中一个液闪瓶内加入2μl 原标记反应液。
（3）在另一个液闪瓶内加人2μl 去除了未掺入核苷酸的回收液。
（4）将2 个液闪瓶置于液闪仪中，测定其cpm。
2.3.9 Southern 杂交
（1）将 25ml 杂交液放入方形塑料盒中，于 55℃下预热。
（2）将待杂交的膜和杂交液一起放入水浴摇床中。
（3）在55℃下预杂交1.5 小时左右。
（4）将放射性探针放在沸水中5 分钟，取出后迅速插入冰水中。
（5）在杂交液中按5×105cpm/ml 的浓度加入变性的探针。
（6）在55℃下杂交约15 小时。
（7）将杂交液中的膜取出，放入1 倍SSC 溶液中于55℃下漂洗10 分钟。
（8）倒去1 倍SSC 溶液，在55℃下用1 倍SSC 溶液及0.1 %SDS 洗脱液漂洗40 分钟。
（9）倒去洗脱液，55℃下用新的1 倍SSC 溶液及0.l%SDS 洗脱液漂洗30 分钟。
（10）将膜放入1 倍SSC 溶液中，于室温下漂洗10 分钟。
（11）取出膜，平摊在洁净、干燥的滤纸上。
（12）当膜上无水珠、膜仍湿润时，用保鲜膜将膜包好准备压片。
2.3.10 放射自显影
（1）在暗室或微弱安全光条件下，打开X 光曝光暗盒。
（2）放入一张增感屏，光滑面朝上。
（3）将膜放在增感屏上（膜与膜之间不能重叠）。
（4）置X 光胶片于膜上。
（5）将另一张增感屏光滑面朝下放在X 光胶片上。
（6）盖紧X 光暗盒，置—70℃冰箱内曝光1～7 天。
2.3.11 X 光胶片的冲洗
（1）显影：将X 光胶片从暗盒中取出，放入显影液中，间断性摇动数分钟。
（2）停显影：将X 光胶片放入1.5%的冰醋酸溶液中漂洗数秒钟。
（3）定影：将X 光胶片转入定影液中定影数分钟。
（4）冲洗：将定影完毕的X 光胶片放在流水中冲洗20 分钟，然后晾干。
2.3.12 放射性探针的除去
（1）将300～500ml 蒸馏水煮沸。
（2）往蒸馏水中加SDS，至最终浓度0.l%。
（3）将放射自显影后的膜浸入其中。
（4）待冷却至室温时将膜取出、烘干，即可用于另一种探针的杂交。

Ⅳ 质量相同50°C的蒸馏水0°C的冰激凌哪个热量大

你把概念搞混了吧， 食物的热量是营养学概念，食物中能产生热量的营养素（蛋白质、脂肪和碳水化合物），它们经过氧化产生热量供身体维持生命、生长发育和运动。热能供给过多时，多余的热量就会变成脂肪贮存起来，时间久了，身体就胖起来了。 营养学中用“千卡”做热量的单位，计算食物或饮食所含的热量，首先要知道其中热量营养素的重量，然后利用以下公式计算： 热量(大卡)＝醣类克数×4＋蛋白质克数×4＋脂肪克数×9＋酒精克数×7＋有热量的需要＝热量的消耗 从营养学角度讲，自然是冰激凌热量高了。蒸馏水里什么营养素都没有啊。

Ⅳ 蒸馏水怎么烧

比较简单的方法是:
拿一大一小两个干净容器(注意小的要特别干净),在大的容器里乘专点水(最好是热水),然后把小容器放属进去(水不要淹过容器),用保鲜膜把大的容器口封住,在保鲜膜中央放以块小石子之类的东西,使凹下去的地方正对着小容器口.
然后就可以在边上坐着等了~
原理:容器内的水蒸发后,水蒸气遇到保鲜膜放热液化,形成水珠,然后顺着斜面流下,正好落到小容器里,就是干净的蒸馏水了~
如果满意记得采纳哦！
你的好评是我前进的动力。
(*^__^*) 嘻嘻……
我在沙漠中喝着可口可乐，唱着卡拉ok，骑着狮子赶着蚂蚁，手中拿着键盘为你答题！！！

Ⅵ 配置琼脂糖胶时,可以用蒸馏水和高浓度的TAE液吗

1.用蒸馏水将制胶工具洗干净 准备好制胶平板 用琼脂将模具边缘封闭 架好梳回子
2.根据要分离的答样品（DNA）大小配制合适浓度的琼脂凝胶 准确的称取一定量的琼脂糖干粉 加入到合适体积的锥形瓶中 加入一定量的电泳缓冲液（30ml左右TAE） 放入到微波炉内加热融化 冷却片刻（不烫手即可）
3.融化后的琼脂溶液摇晃混匀 倒入电泳槽中 等其凝固
4.室温下凝固30-40min左右 小心的拔出梳子 取出凝固好的凝胶放入电泳槽内 准备上样
5.在电泳槽中倒入电泳缓冲液（TAE）没过胶面1mm左右 去除胶孔内的气泡
6.上样 5ulDNA样品加入1ul上样缓冲液（loading buffer）和1ul的染料 用抢混匀后加入到凝胶孔内
.上样结束 接通电源 红色正极 黑色负极 DNA样品有负极往正极运动 加样孔侧为负 40-50v电压 电压30敏左右即可（< 40min）
8.电压结束 关闭电源 凝胶成像仪上观察电压位置并比对marker判断大小

Ⅶ 蒸馏水和普通水 矿泉水有什么不同

其实喝什么水都好，主要是补充H2O分子。
1.有些人说矿泉水含有矿物质，补充矿物质。又有人说不能喝太多矿泉水，会长结石。其实这都是不科学的，因为矿泉水里面的矿物质含量确实太低了，这么微量的矿物质不会对身体有什么重大的影响，更不会说长出结石。很多时候长结石都是因为水喝得不够造成的，引起尿液浓缩，草酸析出和钙结合形成结石。
所以无论矿泉水、自来水还是蒸馏水都好，其区别很少。没有说好坏。
桶装水频频出现卫生问题，有些牌子的直接用自来水来冒充，毕竟没有经过消毒，所以还是对身体不好的。还是挑牌子好的或者喝的时候加热过。
2.用蒸馏方法制备的纯水。可分一次和多次蒸馏水。水经过一次蒸馏，不挥发的组分（盐类）残留在容器中被除去，挥发的组分（氨、二氧化碳、有机物）进入蒸馏水的初始馏分中，通常只收集馏分的中间部分，约占60％。要得到更纯的水，可在一次蒸馏水中加入碱性高锰酸钾溶液，除去有机物和二氧化碳；加入非挥发性的酸（硫酸或磷酸），使氨成为不挥发的铵盐。由于玻璃中含有少量能溶于水的组分，因此进行二次或多次蒸馏时，要使用石英蒸馏器皿，才能得到很纯的水，所得纯水应保存在石英或银制容器内。
3.重水(或称氘化水，化学式D2O或者2H2O)是水的一种，它的质量比一般水要重。普通的水(H2O)是由两个只有质子的氢原子和一个氧16原子所组成，但在重水分子内的两个氢同位素，比一般氢原子有各多一个中子，因此造成重水分子的质量比一般水要重。在自然界中，重水的含量很少。
由于普通水和重水都是由相同数量的氢和氧原子组成，两者的化学反应皆会接近相同。但在物理上，重水的溶点和沸点比普通水稍高，在一个大气压力下，重水的溶点是摄氏3.82度，沸点是摄氏101.4度。
密度方面，在摄氏20度和一个大气压力的环境下，重水的密度是1.105g/cm3。由于重水比普通水不容易被电解为氢和氧，以及与普通水相比，其含量稀少的关系，人们便以电解的方式来提炼纯度更高的重水。因此，重水的价格也比较昂贵。
有另一种重水称为半重水，HDO，它只有一个氢原子是多一个中子的重氢。一般的半重水都并不纯正，通常是50%HDO，25%的H2O
及
25%的D2O。

Ⅷ 蒸馏水在50度的PH值是否小于7

是的，pH值小于7， 但仍然是中性， pH值的计算方法不管多少度都是一样的， 但中性pH值在不同的温度有所不同。（和Kw有关系）

Ⅸ 稀释50*TAE溶液到1*TAE是用蒸馏水还是一般的水

做胶的TAE当然用双蒸水

如果是槽中使用的电泳缓冲液，单蒸水也可以

Ⅹ 剃度稀释都用蒸馏水还是用溶解溶剂

做胶的TAE当然用双蒸水
如果是槽中使用的电泳缓冲液,单蒸水也可以