圆灯管22w卫生间和蒸馏器

㈠ 现代生物及农业技术在药用植物研究和生产中的应用是什么

（朱蔚华）

1902年，最早作植物组织培养实验的G.Haberlandt预言，高等植物的离体细胞可以长成植物体。这一假说成为以后植物组织培养的理论依据。

1937年，White建立了组织培养的综合培养基，并和Gautheret等人首次成功地用烟草的茎形成层细胞和胡萝卜根的小块，在人工培养的条件下，使细胞增殖和诱导出愈伤组织。他们建立起来的植物组织培养的基本方法，成为以后各种植物进行组织培养的技术基础。

1948年，F.Skoog和崔澂发现，在培养烟草茎段和髓的培养基上，附加适当比例的腺嘌呤和生长素可以控制植物的组织长苗或长根，也就是说当腺嘌呤/生长素的比例高时产生芽，比例低时形成根。其后，C.D.Miller等（1956）发现，激动素代替腺嘌呤效果更好，建立了激动素/生长素比例的控制器官分化的激素模式。这种激素“控制论”的理论在植物组织培养研究中，至今仍起着指导作用。

50年代，组织培养技术发展迅速，由静止的固体培养发展到液体培养，其中又分悬浮培养、微室培养、看护培养、平板培养等。1958年Steward等人，用液体悬浮培养把胡萝卜的体细胞经胚状体的发育途径，培养成完整植株并且开花结实。这项重大突破，不但证实了Haberlandt的“细胞全能性”的设想，而且也为组织培养中研究器官形成和胚胎发生，开创了一个新的领域。

60年代初E.C.Cocking等人用真菌纤维素酶分离植物原生质体获得成功，为近年来新发展的原生质体融合技术、体细胞杂交等遗传工程的迅速发展创造了条件。

近二十年来，由于培养的植物细胞在一定条件下所表现的全能性规律，使组织培养技术在生产上的应用得到了重视与发展，已逐渐成为农业、林业、园艺、医药等方面的重要研究手段，并且带动了形态、细胞、生理、生化、遗传育种等一系列学科的进展。

由于分子生物学和生物工程的发展，促使植物组织培养技术日趋完善。60年代后植物组织培养开始在生产上应用，使植物生产走向工厂化的应用时期。花卉及草本植物，用无性繁殖系快速繁殖植株，工厂化生产的试管品种商品化；应用细胞大量培养技术生产药物的方法，已在日本、联邦德国等国家获得成功。总之，植物组织和细胞培养是一项具有很大潜力的新兴的生物技术，将以崭新的面貌投入世界新的产业革命的行列，而展示美好的前程。

目前植物组织和细胞培养技术在植物学等学科的实际应用，主要在两个方面：（1）植物育种与快速繁殖；（2）生理活性物质的生产。

一、植物组织培养的实验设备、灭菌方法和基本培养基

（一）植物组织培养的实验设备

1.实验室的设置

（1）无菌操作室室内有供接种用的净化工作台，放置接种用具和培养物的工作边台，天花板或墙上安装紫外光灯管供灭菌用。如有细菌过滤的通气装置更好。

（2）培养基配制室

用于配制各种培养基，室内须有较大面积的平面工作台以及放置各种化学药剂及器皿的柜架。存放配制好的培养基母液的冰箱，蒸馏水制备及贮存的设备。

（3）恒温培养室

培养室内需要有控制恒温的空气调节器，以及照明装置。恒温室的温度一般保持在25℃左右，温差最好不超过±1℃。

培养室内须有培养架，摇床，转床等培养装置及设备。

（4）细胞学实验室

放置各种显微镜和解剖镜，主要观察培养结果。有条件时可建立摄影设备，摄制实验结果。

（5）化学实验室

置备各种常规和先进的化学分析和测定的仪器设备，进行各种化学分析和测定工作。

2.仪器和用具

（1）玻璃器皿

应用碱性溶解度小的硬质玻璃制成的仪器和器皿，特别是进行长期培养时，如选用非优质玻璃制品，则易发生不良影响。

常用的玻璃器皿有：三角瓶、奶头瓶、T型管、角形培养瓶、圆形培养瓶、L形试管、平行有（无）角试管、圆形扁瓶、培养皿、玻璃环、载玻片、盖玻片、漏斗、分装器、注射器、圆底烧瓶、分液漏斗、玻板、玻璃柱、冷凝器、提取装置、染色缸、酒精灯。

（2）用具和器械

选用医疗器械和微生物实验室使用的器具，如刀、剪、各种镊子、解剖刀、接种针。

（3）仪器和设备

一般需要有天平、酸度计、离心机、显微镜、解剖镜、温箱、烘箱、冰箱、摇床、转床、自旋式培养架、分光光度计、薄层扫描仪、高压液相色谱仪等。

（二）植物组织培养的灭菌方法

1.器皿和培养基的灭菌

培养皿、工作服、口罩、帽子等可用高温消毒，一般用1.2个大气压，20—30分钟；培养基的消毒时间不宜过长，否则有些物质易分解破坏，1.2个大气压，15分钟就足够了。金属器械的消毒，一般于使用前浸泡在70%乙醇中，用时在火焰上点燃消毒冷却后使用。

2.植物材料的灭菌

植物材料的灭菌主要是外部灭菌，须根据材料的种类对杀菌剂的敏感性来选择消毒剂的种类与浓度和处理时间的长短。首先将实验材料在肥皂粉溶液中仔细刷洗并用流水冲洗干净，然后参照表13—1和表13—2所列的方法和顺序进行灭菌。

表13—1 常用灭菌剂效果的比较

表13—2 植物不同器官的灭菌顺序（三）植物组织培养的基本培养基

1.培养基的成分组成

植物组织培养基通常由以下几类物质组成（表13—3）：

表13—3 几种常用培养基的成分组成（单位：mg/l）

（1）无机营养物

无机营养物包括大量元素和微量元素。大量元素除碳（C）、氢（H）、氧（O）外，就是氮（N）。氮通常用硝态氮或铵态氮，但在培养中多用硝态氮，也有将硝态氮与铵态氮混合使用。磷常用磷酸盐，硫常用硫酸盐。钾是主要的阳离子，钙（Ca）、钠（Na）、镁（Mg）的需要量较少。大量元素的配合比率一般都是沿用培养整体植物的Knop溶液的配方修改而成。在一般情况下，营养培养基中至少要含有各为25mmol的硝酸盐和钾。铵的含量超过8mmol时常对培养物有毒害作用；但对常规的愈伤组织培养和细胞悬浮培养，硝酸盐加上铵的浓度可以提高到60mmol。钙、硫、镁的浓度在1—3mmol范围内较为合适。而所需的钠氯化物则由钙盐、磷酸盐或微量营养物提供。微量元素包括碘（I）、硼（B）、锰（Mn）、锌（Zn）、钼（Mo）、铜（Cu）、钴（Co）和铁（Fe），其中碘可能是不必需的。

（2）碳源和能源

大多数植物细胞对蔗糖的需要范围是2—4%，在有些植物组织培养中，蔗糖的浓度高达7%甚至15%。糖源在培养基中除作为碳源和能源外，可能还有其它作用。蔗糖也能用葡萄糖和果糖来代替，其它的糖类均不够理想。肌醇可能并不是必需的，但在一般培养基中均用了较大的浓度，这可能与它有促进愈伤组织的生长作用有关。

（3）维生素

在各种维生素中，盐酸硫胺素（B1）可能是必需的，而烟酸及盐酸吡哆辛（B6）对生长只有促进作用。

（4）生长调节物质

植物激素是培养基中不可缺少的组成成分，它对植物愈伤组织的诱导、培养生长、器官分化和次生产物的代谢，都有直接的影响。通常加入于培养基中的激素有两类：一是生长素，常用有2，4-D、萘乙酸（NAA）、吲哚乙酸（IAA）、吲哚丁酸（IBA）等；另一类是细胞分裂素，常用的有激动素（Kt）、玉米素（Zt）、6-苄基嘌呤（6-BA）。2，4-D的适宜浓度为10-7—10-5mol，IAA的为10-10—10-5mol，以1—10mg/l为最通用。NAA的适宜浓度范围比前二者均高。在通常情况下，只用2，4-D（10-5—10-7mol）就可以成功地诱导产生愈伤组织。如将2，4-D等生长素物质与一种细胞分裂素配合使用时，其效果会更好。诱导外植体分化植株时，用萘乙酸与一种细胞分裂素配合可能更好。在细胞分裂素中，激动素与6-苄基嘌呤均使用得较普遍，对愈伤组织的生长均有促进作用，其适宜浓度为10-7—10-6mol。

（5）氨基酸

培养基中应包括某些氨基酸，例如甘氨酸。另外像水解酪蛋白也是组织培养中常采用的，它是一种具有多种氨基酸的混合物，特别是在分化培养基中加入一定量的水解酪蛋白，可促进胚胎发生和多胚性出现。一些氨基酸是某些次生物质的前体物（如苯丙氨酸、鸟氨酸等是莨菪类生物碱生物合成的前体物），当它们加入培养基中，会明显地增加这类次生物质在组织培养物中的含量与产量。

（6）有机添加物

一些天然产物加入培养基中，它们对愈伤组织的诱导和维持，以及促进生长和次生物质的形成与积累都是有益的。其中最常用的有椰子乳、酵母提取物、番茄汁、大豆粉等。其使用的浓度范围：椰子乳为10%（体积/体积），酵母提取物为0.5%，番茄汁为5—10%，大豆粉0.1—0.5%。这些天然添加物，由于成分复杂且难保证重复一致，所以在培养基的配制中更倾向于选用完全已知的合成化合物。

2.培养基的制备

（1）水和药品

配制培养基最好使用玻璃容器蒸馏过的去矿质盐的蒸馏水。所用的化学药品应较纯。生长调节物质在用前最好进行重结晶。蛋白质水解物最好用酶水解的，这样可以使氨基酸更好地在自然状态中保存。

（2）母液（贮备液）

配制培养基方便的方法是先制备一系列母液。大量的矿质盐（大量元素）可配成浓于使用浓度的10倍。溶解矿质盐时，力求把Ca2+与SO2-4—和PO3-4错开，以免形成硫酸钙和磷酸钙的不溶物，最好是用一定量蒸馏水将矿质盐分别溶化后，然后按顺序加入，最后加水至一定体积。微量元素由于用量少，可配成使用浓度的100—1000倍浓缩液，与大量元素等贮存于冰箱中。维生素每种分开配制，可按0.2—1mg/l的浓度分别配在容量瓶中贮存。铁盐需单独配制（见前）。植物激素类物质，配制时的要求各有不同。NAA、2，4-D和IAA等生长素类物质，称好药品后先用少量95%乙醇溶化，然后再加蒸馏水稀释至一定浓度；细胞分裂素类物质，则宜先用少量0.5或1N的盐酸来溶解，然后加蒸馏水至所需量；叶酸则应用少量的稀氨水溶解，然后再加蒸馏水至所需量；生物素配制时可直接溶于水。

（3）高压灭菌和保存

配制培养基时，先将各种母液按所需容积分别取出并混合在一起，临时加入蔗糖、激素和其它附加成分，并与预先已加热溶化的琼脂（液体培养则不加琼脂）混合后，用氢氧化钠溶液或1N盐酸调节pH值至要求的一定值（5.5—5.8之间），然后再分别装入培养容器中。制备好的培养基在高压灭菌锅中，120℃，1.1kg/cm2的高压下灭菌15—20min。灭菌后的培养基可在室温下贮存（最适的温度为10℃），并应在两周内应用。

3.几种常用培养基的特点

在不同的培养基中，一般无机盐的变化较大，有时也因加入不同的氮源而形成各自的特点。MS是1962年Murashige，T.和Skoog，F.为培养烟草而设计的培养基，它对在固体培养条件下诱导愈伤组织，在液体培养条件下作细胞悬浮培养及用于胚、茎尖、茎段和花药等培养和形态发生研究方面，均获得了明显的成功。MS培养基中无机养分的数量和比例均较合适，足以满足很多植物细胞在营养上和生理上的需要。故在一般情况下，无需在培养基中加入酪朊水解物、酵母水解物或椰子乳等有机附加成分。与其它培养基相比，MS培养基中的硝酸盐、钾和铵的含量高，这是它显著的特点。与MS培养基相近的，还有LS（Linsmaier，E.M.和Skoog，F.1965）和RM（田中，1964）培养基，它们的基本成分均与MS培养基相同，唯前者去掉了甘氨酸，维生素B6和烟酸，后者把NH4NO3的用量提高到4950mg/l，把KH2PO4提高到510mg/l。与MS培养基相比White（1963）培养基则是一个具有较低浓度无机盐培养基，但它的使用也十分广泛，无论在胚胎培养或一般组织培养上也有很好的效果。B5培养基是Gamborg等（1968）设计的，它的主要特点是含较低的铵，而铵这一营养成分可能对某些生长物有抑制生长的作用。N6培养基是中国科学院植物研究所和黑龙江省农业科学院设计的，也是一个很适用的培养基，目前在国内已广泛用于花药培养及某些植物的组织培养上，其成分与B5相似，但却不含钼。Heller（1953）培养基是欧洲使用得较普遍的一种培养基，它的无机盐含量低，同时还缺乏钼盐，但含有镍铝等化合物。

从总的趋势来看，近代的培养基都倾向于采用高浓度的无机盐。在氮的运用上，不少是采用硝态氮和铵态氮的混合，或只是硝态氮。微量元素的作用研究得较少，大多数配方也基本上接近MS培养基的，而所包含的这些微量元素成分已满足组织培养中愈伤组织和细胞生长的需要。对于铁盐通常则采用FeSO4与Na2-EDTA（螯合剂）的混合物居多。

二、植物组织和细胞培养在药物生产中的应用

近些年来由于自然环境的人为破坏，滥采乱伐，劳力费用上涨及引种野生植物在技术上和（或）经济上的困难，导致植物资源急剧减少，而确保药用植物充分供应的困难日益增加。六十年代以来，人们开始应用植物组织培养技术研究植物药的生产问题。近年来随着现代生物技术的发展，植物细胞大量培养获得成功，为植物药物开辟了一条崭新的工业化生产的新途径。

细胞培养系统比一般整体植物栽培，具有多方面的优越性：（1）有用物质的生产是在可控制的条件下进行，而不必依赖气候和土壤条件，并节省土地；（2）细胞培养无微生物和虫害；（3）生长周期短，缩短植物引种驯化和扩大繁殖的漫长过程；（4）可以进行特定的生物转化反应，可以探索新的合成路线和获得新的有用物质；（5）可以通过筛选新的细胞系，改变培养条件，以提高生产率和减少生产费用。

（一）植物组织和细胞培养技术

1.愈伤组织的诱发和培养

愈伤组织是植物组织和细胞培养的基本材料，所以诱发愈伤组织和进行培养是植物组织和细胞培养的基础性工作之一。

诱发愈伤组织的工作程序大致如下：

（1）植物材料（包括植物种类与部位）的选择；（2）材料的制备与消毒；（3）培养基的选定与制备；（4）接种与培养；（5）继代培养。

目前已经成功地从许多植物诱发出愈伤组织，其中以双子叶植物最多，单子叶植物较少。此外，裸子植物、蕨类和藓类植物也有成功的例子。因此可以说，所有的多细胞植物都有诱发愈伤组织成功的潜在可能性。双子叶植物除有广泛的实用价值外，且它们能够迅速地长出愈伤组织。植物的各种组织，如维管束形成层，贮藏器官的薄壁组织，根的中柱鞘，胚乳、子叶、叶肉组织及维管束组织等，在合适的条件下，都能形成愈伤组织。

愈伤组织的诱发多在固体培养基上进行。固体培养一般在25—28℃进行，每隔4—6周进行一次继代培养。

愈伤组织的培养方式一般可分为固体培养和液体培养两种。固体培养是指向培养基中加入一定量的凝固剂（0.6—1.0%琼脂等），加热溶解后，分别装入培养容器中，冷却后即为固体培养基。而不加凝固剂者则为液体培养基。

固体培养为静置培养，其优点是简便，只需一般玻璃器皿即可，不像液体振荡培养那样需要摇床、转床等复杂的机械设备，且占地少，一间小培养室就可以放置很多培养器皿。但固体培养也存在如下缺点：愈伤组织只有一部分表面和培养基接触，造成愈伤组织生长不均衡；接触培养基的底层组织气体交换不良，同时也使生长过程排出的有害物质堆积；静止放置时，由于重力作用或光线照射不均匀，而使组织出现极化现象，而难得相当一致的群体。

液体培养又分静置和振荡两种。液体静置培养与固体培养一样也是方法简便，且培养液中不会出现营养物质浓度差异现象；但由于使用的局限性较大，故目前已很少采用。振荡培养是使植物组织在液体培养基中不断转动，从而可以消除静置培养中的缺点。振荡培养又可分为两类：（1）连续浸没的，通过搅动或振动培养液的方法使组织悬浮于培养基中，常用摇床进行培养；（2）定期浸没的，用T型管，乳头瓶作培养容器，在转床上进行培养。在转动过程中培养材料在液相和气相中重复出现。

2.细胞悬浮培养

植物细胞悬浮培养技术是由愈伤组织的液体培养技术基础上发展起来的一种新的培养技术。近二十多年来，从试管悬浮培养发展到大容积发酵罐培养，从不连续培养发展到半连续和连续培养，直到近年来最新型的浊度恒定法和化学恒定法等自动控制的较大规模的连续培养。细胞悬浮培养的特点是：（1）能大量提供均匀的植物细胞；（2）细胞增殖的速度比愈伤组织快；（3）适合于大规模培养。因此有可能把植物细胞如同微生物一样来培养，应用于发酵工业中来，生产一些植物特有的产物，从而开辟一条工业化生产植物产品的新途径。细胞悬浮培养是使游离的植物细胞在液体培养基中进行培养，但是因为植物细胞具有聚集在一起的特性，故直到目前为止，还不能使悬浮液中只有游离的单细胞，而往往是一些小的细胞团。

（1）悬浮培养的设备和装置

①摇床 广泛地用于植物细胞悬浮培养中。易于碎裂的愈伤组织块，经摇床的连续振荡可以得到分散的细胞悬浮液。也可用于悬浮细胞的继代培养。

②转床 每分钟一转。用T型管或奶头瓶作为培养容器。

③自旋式培养架 可用较大的瓶作为培养容器。

④连续培养设备 通常依靠通入无菌的压缩空气或既通入空气又不断搅拌的方法，使细胞一直处于悬浮状态。在这样的搅动装置中，由于盛放培养液的容器是静止的，故能容易地把贮存新鲜培养液的容器，空气补给装置等和培养容器连接起来。培养容器内可安装一些蛇形管，管内放入电热丝就可加热，通入冷水就可降温，因此这类装置不必安装于恒温室内。这类装置一般都有能够简便控制温度，搅拌速度，通气速度，照明强度，营养液流入速度等的装置，而且还常与氧电极，pH电极，细胞密度测定器等联接起来，成为一套初步自动控制的连续培养装置。几种植物细胞大量培养装置有用搅拌的发酵装置，用振荡器的发酵装置，利用导管及旋转叶轮的发酵装置，气泡搅动的发酵装置和气升式发酵装置等。

（2）悬浮细胞的培养基

常用的适合愈伤组织的培养基，不一定对细胞悬浮培养也最合适。通常诱发愈伤组织的培养基可以作为确定最适培养基的出发点。特别需要注意生长素类和细胞激动素类的用量对悬浮培养细胞聚集性的影响，必须选用使细胞易于单一游离的培养基。

在悬浮培养时pH常有相当大的变动，因此必须加入EDTA等螯合剂使铁和其他离子长期处于可利用状态。硝态氮和铵态氮之间比例的调整也可作为稳定pH的一种方法。加入一些固态缓冲物，如微溶的磷酸氢钙、不溶的磷酸钙、碳酸钙也是稳定pH的一种方法。

（3）悬浮细胞的继代培养

悬浮培养过程中，细胞数目增长的变化情况见图13—1。基本上是一条S形曲线。一开始是延迟期，细胞很少分裂；接着是对数生长期，细胞数目迅速增长，增长速率保持不变；以后进入逐渐减慢的静止期；最后达到增长完全停止期。细胞在培养中，一般在静止期之初进行继代培养，有的在静止期之前增殖减慢时即需传代，有的甚至在对数生长期末立即传代，以求加速细胞增殖。

图13—1 悬浮培养细胞在一个培养世代中细胞数的增长情况示意图

近年研究采用DNA合成抑制剂和植物激素处理法等，使培养中的细胞在一定条件下，进入细胞分裂周期的某一个时期（如G期），然后从下一个时期开始，使大部分细胞或全部细胞同步分裂，即所谓同步培养。这样不仅可以详细了解细胞周期的真实过程，还可以认识控制着从亲代细胞到子代细胞过程中生化变化序列的因素。由于同步培养可以频繁地取样进行生化学和细胞学的分析，取样量可以较大，并且不会影响到剩下来的群体继续生长，这样对研究细胞周期、细胞分化、次生物质代谢等重要过程提供了必要的技术手段，是植物细胞培养技术发展中的又一重要进展。

综上所述，目前植物组织和细胞培养技术已从静止的固体培养发展到液体培养，其特点是可以使培养中的组织和细胞的养分和供氧情况得到改善。在规模和方法上正沿着从小量到大量，在应用上从试管到大罐和同步培养，在操作上从手工到自动化方向发展。这些进步和发展对植物组织和细胞培养的研究和生产应用产生重大的影响。

（二）植物组织和细胞培养产生的药物成分

自1950年Bonner等对用银胶菊愈伤组织产生天然橡胶进行研究以来，许多科学工作者围绕着愈伤组织能产生哪些有用物质，如何提高有效成分得率等问题，进行了大量的工作，并取得了一些成果。越来越多的人认为利用植物组织和培养细胞有可能生产用于治疗各种疾病的生物碱、萜烯类、醌类、固醇类、酶等，以及从培养物中提取肽类和蛋白质物质。Nickell（1980）概括介绍了植物组织培养能产生50余类化合物及其中28类潜在的产品。郑光植（1980）综述列表举出药用成分，来源植物与药物含量共60多条。日本协和发酵公司的见泽（Misawa，M.，1980）介绍了由工业实验室或政府进行的，通过植物组织培养产生生物碱，固醇类、萜类、醌类和其他生理活性物质包括酶等的研究成果。据世界卫生组织公布，从高等植物提取的最普通而又必不可少的药物有17种。其中11种药物的来源植物已有组织培养（表13—4）。

表13—4 来源于高等植物的普通而又不可少的药物

1.生物碱

利用植物组织和细胞培养生产生物碱是格外地困难，然而产生生物碱的药用植物的组织培养是研究得最多的一个方面（表13—5）。但其含量通常比原植物低。

表13—5 植物愈伤组织中的生物碱

表13—5 植物愈伤组织中的生物碱（续）-1

（1）莨菪烷生物碱

Mothes、West、Chan、Metz、木岛正夫、Bhandary、Thomas、Stohs、Sairam、Tabata、Hiraoka、Cliokshi等先后对曼陀罗、颠茄、天仙子、莨菪等的根、愈伤组织、悬浮细胞进行了大量的研究，但药用目的物没有或含量很低。West（1957）首先肯定了颠茄根的愈伤组织中存在莨菪烷生物碱。检查到根愈伤组织中阿托品含量为0.47—0.53%。但茎叶的愈伤组织中未检查到。Chan等（1956）将曼陀罗、柏叶曼陀罗、无毒曼陀罗的各类器官诱导出的愈伤组织，进行静置培养与振荡培养，测定愈伤组织中生物碱含量。其中以曼陀罗和无刺曼陀罗种子愈伤组织中含量最高，达0.016—0.056%，根为0.012—0.015%，茎为0.004—0.014%，叶为0.007—0.010%。此结果表示因诱发愈伤组织的器官不同，生成生物碱的量亦有差异。West等还指出同一起源的曼陀罗的愈伤组织株之间，在合成生物碱的能力上也有差异。郑光植等（1976）在三分三愈伤组织培养中，最初测定莨菪碱含量为0.025%、东莨菪碱的含量为0.009%，均低于原植物（分别为0.127%和0.016%）。但因改良培养条件、增加营养、改变生长调节剂、补充前体物等各方面的研究，使两种生物碱的含量总共达0.554%（原植物为0.139%），其中东莨菪碱最高含量达0.495%（茎为0.016%），比最初愈伤组织的含量高4—4.5倍。程克棣等（1987）研究结果表明山莨菪等细胞不仅能产生托品类生物碱，还能将莨菪碱转化为山莨菪碱和东莨菪碱。

（2）吡啶生物碱

在产生吡啶生物碱的组织培养研究中，烟草研究得最早最多。早在1948年Dawson就对烟草中生物碱的生物合成进行了研究，他的1960年的报道粘毛烟草的组织培养中，烟碱的含量在最初阶段急剧减少，当成典型的愈伤组织时，就没有烟碱了。但Speake等（1964）证明，烟草（Virginia品种）根、茎、叶的

㈡ 国家标准规定了矿泉水的卫生要求和检验方法

GB 16330-1996 饮用天然矿泉水厂卫生规范

GB/T 5009.167-2003 饮用天然矿泉水中氟、氯、溴离子和硝酸根、硫酸根含量的反相高效液相色谱法测定

GB 8537-2008 饮用天然矿泉水

GB/T 8538-2008 饮用天然矿泉水检验方法

饮用矿泉水检验方法

39.1.7 精密度和准确度 同一实验室对两个地下水样品分别进行8次分析,平均值分别为3.0μg/L和16.2μg/L,相对标准偏差分别为16.1%和4.7%。对8个不同含量的地下水样品做加标回收实验,测得回收率为97.0%～116.0%。 39.2 气相色谱法

39.2.1 测定范围 本法最低检测量10ng,最低检测浓度1μg/L,测定范围1～10μg/L和10～100μg/L。水样中余氯,有机氯化合物不干扰测定。

39.2.2 方法提要 在酸性条件下,水样中的碘化物与重铬酸钾发生氧化还原反应析出碘与丁酮生成3－ 碘丁酮2,用气相色谱法电子捕获检测器进行定量测定。 39.2.3 试剂和材料

39.2.3.1 载气:高纯氮99.999%。

39.2.3.2 配制标准品和样品预处理时使用的试剂和材料: a.无碘化物纯水:普通蒸馏水按每升加2gNaOH重蒸馏; b.硫酸溶液［c(H2SO4)=2.5mol/L］:取139mL优级纯浓硫酸,缓慢地加到500mL纯水中,并稀释至1000mL; C.重铬酸钾溶液(0.5g/L):称取0.05g重铬酸钾(K2Cr2O7)溶于纯水,并稀释至100mL; d.丁酮:重蒸馏,收集79～80℃馏分; e.环己烷:重蒸馏,收集80～81℃馏分;f.硫代硫酸钠溶液(0.5g/L); g.无水硫酸钠:600℃烘烤4h,冷却后密封保存; h.碘化钾,优级纯。

39.2.3.3 制备色谱柱时使用的试剂和材料: a.色谱柱和填充物参考39.2.4.1.3有关内容; b.涂渍固定液所使用的溶剂:丙酮,分析纯。 39.2.4 仪器 39.2.4.1 气相色谱仪 39.2.4.1.1 电子捕获检测器。

39.2.4.1.2 记录仪,与仪器匹配,满量程1mV。

39.2.4.1.3 色谱柱: a.色谱柱类型:硬质玻璃填充柱,长2m,内径3mm。b.填充物载体:ChromosorbWAW DMCS80～100目; 固定液:OV-17,OV-210。 C.涂渍固定液的方法:按0.5%OV-17+3.0%OV-120配比分别用丙酮将OV-17, OV-210溶解并分别涂在载体上。在红外灯下挥去溶剂,混匀装柱。 d.色谱柱老化:将填充好的色谱装机(不接检测器),通氮气于220℃连续老化48h。

39.2.4.2 微量注射器:10μL。 39.2.4.3 分液漏斗:60mL。 39.2.5 样品

39.2.5.1 样品性质:水样。

39.2.5.2 水样采集及贮存方法:用玻璃瓶采集水样,尽快测定。

39.2.5.3 水样预处理:取10mL水样于60mL分液漏斗中,加硫代硫酸钠溶液(39.2.3.2f)0.2mL,混匀,加硫酸溶液(39.2.3.2b)0.1mL,加入丁酮(39.2.3.2d)0.5mL,混匀。加入重铬酸钾溶液(39.2.3.2C)1mL,振荡1min,放置10min,加入10.0mL环己烷(39.2.3.2e),振荡萃取2min,弃去水层,已烷萃取液用纯水洗涤2次,每次5mL,弃去水层,环己烷萃取液经无水硫酸钠脱水干燥后收集于10mL具塞比色管中供色谱测定。

㈢ 吸顶灯上我蒸馏器经常坏是什么原因拜托了各位 谢谢

朋友，镇流器经常坏，一般为1、接线不可靠（应该紧固、可靠）；2、镇流专器质量不会；3、镇流器和灯容量属不匹配（镇流器容量应该大于或者等于灯容量）；4、吸顶灯控制是否使用电脑合（一般应该使用多联开关控制）。

㈣ 家庭废物利用的窍门

残茶的妙用

湿茶叶可以取掉容器里的鱼腥味和葱味。

可以煮茶叶鸡蛋，其味道清香，非常可口。

用残茶叶擦洗有油腻的锅碗、木、竹桌椅，可使该物品更为光洁。

把残茶叶晒干，铺撒在潮湿处，能够去潮。

残茶叶晒干后，还可以装入枕套充当枕芯，枕之非常柔软。

把茶叶撒在地毯或路毯上，再用扫帚拂去，茶叶能带走全部尘土。

将残茶叶浸入水中数天后，浇在植物根部，可以促进植物生长。

残茶叶还可以喂养刚出的小蚕。

把残茶叶晒干，放到厕所或沟渠里燃熏，可消除恶臭，具有驱除蚊绳的功能。

西瓜皮的妙用

削去青皮，将其切成小方快或细丝，加上盐、酱油、糖等佐料，与辣椒同炒，清脆、香甜、可口。

将去皮切成的小块或小条的瓜条，入水煮沸，再下入番茄、鸡蛋、些汤不仅味佳色艳，而且能消署利尿。

把去皮后的瓜皮切成细长小条，用食盐腌2～3小时后，将盐水沥出，再加酱油、醋或麻油等佐料搅拌，即可食用。

将去皮瓜皮、切成薄片，入在碗里，上铺火腿片，加上调料，上锅清蒸，其味鲜美，清香四溢。

淘米水的妙用

用淘米水洗浅色衣服易去污，而且颜色鲜亮。

沉淀后的淘米水再加热水，可以用来浆衣服。

用淘米水洗手，可用滋润皮肤作用。

用淘米水漱口，可以治疗口臭或口腔溃疡。

将带腥味的菜，放入加盐的淘米水中搓洗，再用清水冲净，可去腥味。

把咸肉放在淘米水里浸泡半天，可去些咸味。

用淘米水洗腊肉要比用清水洗得干净。

用淘米水洗猪肚，比用盐或骨矾搓洗省劲、省事、且干净、节约。

常用淘米水洗泡的菜刀不易生锈。

生锈的菜刀泡在淘米水中数小时后，容易擦干净。

淘米水浇灌花木或蔬菜，可使其长得更茁壮。

用淘米水擦洗后的油漆家具，比较明亮。

用淘米水擦拭新漆器，4～5次后，能除去臭味。

桔子皮的妙用

桔子皮中含有大量的维生素C和香精油，将其洗净晒干与茶叶一样存放，可同茶叶一起冲饮，也可以单独冲饮，其味清香，而且提神、通气。

桔子皮具有理气化痰、健胃除湿、降低血压等功能，是一种很好的中药材。可将其冼净晒干后，浸于白洒中，2～3周后即可饮用，能清肺化痰，浸泡时间越长，酒味越佳。

烧粥时，放入几片桔子皮，吃起来芳香爽口，还可起到开胃作用。 烧肉或烧排骨时，加入几片桔子皮，味道既鲜美又不会感到油腻。 桔子皮可以做成糖桔丝、糖桔丁、糖桔皮、桔皮酱、桔皮香等美味可口的食品。

㈤ 灯管中蒸馏器起到什么作用

绿圈内画的就是镇流复器，是一个制铁心外边缠绕的线圈，也就是电感，在开关刚一给电的时候，电感线圈产生一个很高的瞬时电压，这个高电压让起辉器（跳炮）放电接通，这样可以使灯管的两边电热丝高亮产生放电，灯管点亮。灯管亮了以后电感的瞬时电压消失，起辉器断开，在交流电中起到一个电阻的作用，阻止交流电的变化。使灯管不再闪烁。这是个很聪明的发明。

㈥ 医疗器械的无菌检查法

无菌检查是不能用固体培养基的，要用硫乙醇酸盐流体培养基和改良马丁液体培养基，最好用薄膜过滤法。
请参考国标：
GB/T14233.2-2005

㈦ 化学仪器的复杂仪器

主词条：启普发生器
一种实验室常用的气体发生装置，是荷兰科学家启普（Petrus Jacobus Kipp 1808~1864)发明，并以他的姓命名。它用普通玻璃制成，构造见图。它由球形漏斗、容器和导气管三部分组成。适用于块状固体与液体在常温下反应制取气体，如氢气、硫化氢等。
块状固体在反应中很快溶解、或变成粉末时，不能用启普发生器。
如果生成气体难溶于反应液，可以使用。如二氧化碳可溶于水，但难溶于盐酸；故用石灰石与盐酸反应制二氧化碳时可用启普发生器。
注意：启普发生器不能用于加热！
气密性检查
使用前应先检查装置的气密性。
方法：开启旋塞，向球形漏斗中加水。当水充满容器下部的半球体时，关闭旋塞。继续加水，使水上升到长颈漏斗中。静置片刻，若水面不下降，则说明装置气密性良好，反之则说明装置漏气。漏气处可能是容器上气体出口处的橡皮塞、导气管上的旋塞或长颈漏斗与容器接触的磨口处。如漏气，应塞紧橡皮塞或在磨口处涂上一薄层凡士林。
具体操作
固体试剂由容器上的气体出口加入，加固体前应在容器的球体中加入一定量的玻璃棉或放入橡胶垫圈，以防固体掉入半球体中。加固体的量不得超过球体容积的1/3。液体试剂从长颈漏斗口注入，注液方法与上述注水方法相同。液体的量以反应时刚刚浸没固体，液面不高过导气管的橡胶塞为宜。
使用时，打开导气管上的旋塞，长颈漏斗中的液体进入容器与固体反应，气体的流速可用旋塞调节。停止使用时，关闭旋塞，容器中的气体压力增大，将液体压回长颈漏斗,使液体和固体脱离，反应停止。为保证安全，可在球形漏斗口加安全漏斗,防止气体压力过大时炸裂容器。
特点：符合“随开随用、随关随停”的原则。能节约药品，控制反应的发生和停止，可随时向装置中添加液体药品。 主词条：酒精喷灯
常用的酒精喷灯有座式酒精喷灯和挂式酒精喷灯两种。座式酒精喷灯的酒精贮存在灯座内，挂式喷灯的酒精贮存罐悬挂于高处。酒精喷灯的火焰温度可达1000℃左右。使用前，先在预热盆中注入酒精，点燃后铜质灯管受热；待盆中酒精将近燃完时，开启灯管上的开关（逆时针转）；来自贮罐的酒精在灯管内受热气化，跟来自气孔的空气混合；这时用火点燃管口气体，就产生高温火焰；调节开关阀来控制火焰的大小。用毕后，挂式喷灯座旋紧开关，同时关闭酒精贮罐下的活塞，就能使灯焰熄灭。
构造
学校实验室用的座式酒精喷灯，由灯管、空气调节器、引火碗、螺旋盖、贮酒精罐等部分构成（如图）。火焰温度在800℃左右，最高可达1000℃，每耗用酒精200毫升，可连续工作半小时左右。
使用
1.旋开加注酒精的螺旋盖，通过漏斗把酒精倒入贮酒精罐。为了安全，酒精的量不可超过罐内容积的80%（约200毫升）。随即将盖旋紧，避免漏气。然后把灯身倾斜70度，使灯管内的灯芯沾湿，以免灯芯烧焦。
2.灯管内的酒精蒸气喷口直径为0.55毫米，容易被灰粒等堵塞，堵塞后就不能引燃，所以每次使用前要检查喷口，如发现堵塞，就应该用通针或细钢针把喷口刺通。
3.在引火碗内注2/3容量的酒精，用火柴把酒精点燃，对灯管加热（此时要转动空气调节器把入气孔调到最小），待酒精气化，从喷口喷出时，引火碗内燃烧的火焰便可把喷出的酒精蒸气点燃。如不能点燃，也可用火柴来点燃。
4.当喷口火焰点燃后，再调节空气量，使火焰达到所需的温度。在一般情况下，进入的空气越多，也就是氧气越多，火焰温度越高。
5.熄灭喷灯，可用事先准备的废木板平压灯管上口，火焰即可熄灭，然后垫着布旋松螺旋盖（以免烫伤），使罐内温度较高的酒精蒸气逸出。
注意
1.喷灯工作时，灯座下绝不能有任何热源，环境温度一般应在35℃以下，周围不要有易燃物。
2.当罐内酒精耗剩20毫升左右时，应停止使用，如需继续工作，要把喷灯熄灭后再增添酒精，不能在喷灯燃着时向罐内加注酒精，以免引燃罐内的酒精蒸气。
3.使用喷灯时如发现罐底凸起，要立即停止使用，检查喷口有无堵塞，酒精有无溢出等，待查明原因，排除故障后再使用。
4.每次连续使用的时间不要过长。如发现灯身温度升高或罐内酒精沸腾（有气泡破裂声）时，要立即停用，避免由于罐内压强增大导致罐身崩裂。 主词条：布氏漏斗
布氏漏斗是实验室中使用的一种陶瓷仪器，也有用塑料制作的，用来使用真空或负压力抽吸进行过滤。普遍认为发明者为1907年诺贝尔化学奖获得者爱德华·比希纳，事实上布氏漏斗是由化学家Ernst Büchner发明的。形状为扁圆筒状，圆筒底面上开了很多小孔。下连一个狭长的筒状出口。
使用的时候，一般先在圆筒底面垫上滤纸，将漏斗插进布氏烧瓶上方开口并将接口密封（例如用橡胶环）。布氏烧杯的侧口连抽气系统。然后将欲分离的固体、液体混合物倒进上方，液体成分在负压力作用下被抽进烧杯，固体留在上方。常用于有机化学实验中提取结晶。这种情况的过滤完成后，还可以在上方用少量纯溶剂来洗掉结晶表面的杂质。
主词条：坩埚钳
坩埚钳（crucible tongs），一种常见的化学仪器。通常用来夹取坩埚。一般由不锈钢，或不可燃、难氧化的硬质材料制成。
注意事项
1.必须使用干净的坩埚钳。
2.用坩埚钳夹取灼热的坩埚时，必须将钳尖先预热，以免坩埚因局部冷却而破裂，用后钳尖应向上放在桌面或石棉网上。
3.实验完毕后，应将坩埚钳擦干净，放入实验器材柜中，干燥放置。
4.夹持坩埚使用弯曲部分，其它用途时用尖头。
5.坩埚钳不一定与坩埚配合使用。 主词条：索氏提取器
索氏提取器是由提取瓶、提取管、冷凝器三部分组成的，提取管两侧分别有虹吸管和连接管，各部分连接处要严密不能漏气。提取时，将待测样品包在脱脂滤纸包内，放入提取管内。提取瓶内加入石油醚，加热提取瓶，石油醚气化，由连接管上升进入冷凝器，凝成液体滴入提取管内，浸提样品中的脂类物质。待提取管内石油醚液面达到一定高度，溶有粗脂肪的石油醚经虹吸管流入提取瓶。流入提取瓶内的石油醚继续被加热气化、上升、冷凝，滴入提取管内，如此循环往复，直到抽提完全为止。
从固体物质中萃取化合物的一种方法是，用溶剂将固体长期浸润而将所需要的物质浸出来，即长期浸出法。此法花费时间长．溶剂用量大、效率不高。
在实验室多采用脂肪提取器(索氏提取器)来提取。脂肪提取器(如图所示) 就是利用溶剂回流及虹吸原理，使固体物质连续不断地被纯溶剂萃取，既节约溶剂，萃取效率又高。
萃取前先将固体物质研碎，以增加固液接触的面积。然后，将固体物质放在滤纸包内，置于提取器中，提取器的下端与盛有浸出溶剂的圆底烧瓶相连，上面接回流冷凝管。加热圆底烧瓶，使溶剂沸腾，蒸气通过连接管上升，进入到冷凝管中，被冷凝后滴入提取器中，溶剂和固体接触进行萃取，当提取器中溶剂液面达到虹吸管的最高处时，含有萃取物的溶剂虹吸回到烧瓶，因而萃取出一部分物质。然后圆底烧瓶中的浸出溶剂继续蒸发、冷凝、浸出、回流，如此重复，使固体物质不断为纯的浸出溶剂所萃取，将萃取出的物质富集在烧瓶中。 液—固萃取是利用溶剂对固体混合物中所需成分的溶解度大,对杂质的溶解度小来达到提取分离的目的。 布氏烧瓶，又称抽滤瓶，是实验室中使用的一种玻璃器皿，为烧瓶的一种。配合布氏漏斗过滤用。发明者为1907年诺贝尔化学奖获得者Eard Buchner。
形状类似锥形瓶，但有两个不同：侧面有一个细颈，与真空泵连接。为了抗衡真空造成的负气压，布氏烧瓶的壁比锥形瓶要厚。抽滤瓶的外形极似锥形瓶，只是在管口处多开了一个侧向的连接口，用来接上塑胶管再接到水流抽气帮浦（即水流抽气泵）上。当抽滤瓶口放上漏斗过滤时，此时水流抽气帮浦（即水流抽气泵）开始抽气，使抽滤瓶内的空气压力降低；若漏斗上的滤纸内有任何的溶液存在，由于大气压力和重力的作用，这些溶液即会经过滤纸流入下方的抽滤瓶中，残馀的固体则留在滤纸上，而达到过滤的目的。利用吸滤瓶过滤时，通常使用瓷漏斗置於其上，不能用锥形漏斗。还可以用吹风机对着滤纸吹，加快气流，从而加速抽滤过程。 主词条：砂芯漏斗
砂芯漏斗是耐酸玻璃滤过仪器，系采用优良硬质高硼玻璃组成，具有较高的理化性能。产品适用于化学分析、卫生检验、石油工业、制药工业、染料工业等方面。
注意事项
1、新购置的滤过仪器使用前需用酸溶液进行抽滤，并用蒸馏水冲洗干净，烘干后使用。对于除菌滤器，使用前需高压灭菌，使用后应用洗涤液进行抽滤，然后放入洗涤液中浸泡48小时，取出用蒸馏水冲洗、抽滤、烘干、保存。在烘干过程中，切勿中途开烘箱，要待烘箱降至室温后再打开烘箱取出，以防炸裂。
2、滤器使用后须进行洗涤处理，以免因沉淀物堵塞而影响过滤功效。 主词条：三梁天平
三梁天平因其有三支具刻度的横杆量尺而得名。三梁天平有三组骑码但没有砝码 先使用刻度最大的骑码若指针没归零再调较小刻度的骑码。三梁天平有三支横杆，每支横杆各有不同质量的砝码置于其上，移动砝码的位置即可调整以天平支点为中心，和物体相对边的抗力大小。待测物则盛装在称量纸或是称量盘内再放于天平的称盘上。
使用方法
A.天平之水平位置的调整：旋转天平底盘上的水平螺旋，使底盘中央水平仪之气泡维持在正中央位置。
B.零点校正：把天平横杆支点下方之固定锁锁住，再将三根横杆上的砝码放置在零刻度的刻齿或刻度上。打开固定锁，使横杆自由摆动，当横杆静止时，横杆最右端之水平指针是否指在标度盘之中央零点上？如果指针恰好指在零标度，则天平已归零，可以使用。如果指针指在零标度的下方，则锁住固定锁，旋转平衡调整器之调整螺使向左移，一直到打开固定锁而指针恰指在零标度为止。如果指针指在零标度的上方，则使调整螺向右移。
C.测质量(称重)：锁住固定锁，把等测物体置于物盘中央，如果物体会腐蚀称物盘，则用适当容器或纸张盛垫。预估物体的质量(重量)，把砝码移在预估质量的相应刻度上，打开固定锁，由指针之平衡位置判定物体质量是大于或小于预估质量，改变或移动三根横杆上砝码的位置，直至横杆平衡静止时，指针恰指在零标度。而由三根横杆上之砝码位置，读记物体的质量值。
D.重复上述各步骤，测量待测物体之质量三次，求取平均值，并用有效数字表示其质量大小。 主词条：冷凝管
利用热交换原理使冷凝性气体冷却凝结为液体的一种玻璃仪器。有直形、球形、蛇形三种，规格以长度（mm）表示，有150~300等多种。
用途
用于蒸馏液体或有机备置中，起冷凝或回流作用。
使用范围：蒸汽的温度大于140摄氏度，用空气冷凝管，温度小于140摄氏度，用直形冷凝管。
冷凝管通常使用于欲在回流状况下做实验的烧瓶上或是欲搜集冷凝後的液体时的蒸馏瓶上。蒸气的冷凝发生在内管的内壁上。内外管所围出的空间则为行水区有吸收蒸气热量并将这热量移走的功用。进水口处通常有较高的水压，为了防止水管脱落，塑胶管上应以管束绑紧。当在回流状态下使用时，冷凝管的下端玻璃管要插入一个橡皮塞，以便能塞入烧瓶口中，承接烧瓶内往上蒸发的蒸气。
回流冷凝管
有易挥发的液体反应物时，为了避免反应物损耗和充分利用原料，要在发生装置设计冷凝回流装置，使该物质通过冷凝后由气态恢复为液态，从而回 流并收集。实验室可通过在发生装置安装长玻璃管或冷凝回流管等实现。
直形冷凝管
由内外组合的直玻璃管构成，多用于蒸馏操作蒸汽温度小于140度，不可用于回流。在其外管的上下两侧分别有连接管接头，用作出水口和进水口。
使用方法：使用时，将靠下端的连接口以塑胶管接上水龙头，当作进水口。因为进水口处的水温较低而被蒸气加热过后的水，温度较高；较热的水因密度降低会自动往上流，有助于冷却水的循环。
空气冷凝管
空气冷凝管和直形冷凝管主要是蒸出产物时使用（包括蒸馏和分馏），当蒸馏物沸点超过140度时，一般使用空气冷凝管，以免直形冷凝管通水冷却导致玻璃温差大而炸裂。
球形冷凝管
内管为若干个玻璃球连接起来，用于有机制备的回流，适用于各种沸点的液体。
长期使用后，隔套中的铁锈可以用盐酸洗去。缺点：冷凝后的液体凝固后容易卡在玻璃球中。由于进水口水压较高所以胶管容易脱落，使用时要用铁丝绑住。
蛇形冷凝管
用于有机制备的回流，适用于沸点较低的液体。 主词条：洗瓶
化学实验室中用于装纯水的一种容器，并配有发射细液流的装置。常用的有吹出型和挤压型两种。吹出型由平底玻璃烧瓶和瓶口装置一短吹气管和长的出水管组成；挤压型由塑料细口瓶和瓶口装置出水管组成。
洗瓶用于溶液的定量转移和沉淀的洗涤和转移。经济洗瓶（常用500ml经济洗瓶）、安全洗瓶（蒸馏水洗瓶、甲苯洗瓶、乙醇洗瓶、甲醇洗瓶、丙酮洗瓶、异丙醇洗瓶、次氯酸钠洗瓶）、耐溶剂洗瓶，塑料洗瓶（红）(即红嘴洗瓶) 主词条：克氏烧瓶
1883年发明测定有机化合物中氮含量的方法：他将一定重量的试样与硫酸作用，使试样中的氮全部转变为硫酸铵，然后往硫酸铵溶液中加入碱，再将生成的氨蒸馏到一定体积的标准酸溶液中，再滴定过量的酸，就能测出试样的含氮量。此法普遍用于化学和医学研究及农业生产和药物工业。后人称此法为克氏定氮法。
此法所用的仪 器是一种梨形长颈烧瓶，容量通常约300毫升,微量分析用的可以小到10毫升，后人称这种烧瓶为克氏烧瓶。 主词条：称量瓶
磨口塞的筒形玻璃瓶，用于差减法称量试样的容器。因有磨口塞，可以防止瓶中的试样吸收空气中的水分和CO2等，适用于称量易吸潮的试样。
称量瓶的盖子是磨口配套的，不得丢失、弄乱。称量瓶使用前应洗净烘干，不用时应洗净，在磨口处垫一小纸，以方便打开盖子。
称量瓶主要用于使用分析天平时称取一定质量的试样，也可用于烘干试样。称量瓶平时要洗净，烘干，存放在干燥器内以备随时使用。称量瓶不能用火直接加热，瓶盖不能互换，称量时不可用手直接拿取，应带指套或垫以洁净纸条。
常见的称量瓶有高型和扁型两种，高型的瓶高40mm至60mm不等；扁型的瓶高40mm至60mm不等。扁型用作测定水分或在烘箱中烘干基准物；高型用于称量基准物、样品。称量瓶不可盖紧磨口塞烘烤，磨口塞要原配。 主词条：干燥器
干燥器是通过加热使物料中的湿分(一般指水分或其他可挥发性液体成分)汽化逸出，以获得规定湿含量的固体物料的机械设备。
注意事项
（1）干燥剂不可放得太多，以免沾污坩埚底部。
（2）搬移干燥器时，要用双手拿着，用大拇指紧紧按住盖子。
（3）打开干燥器时，不能往上掀盖，应用左手按住干燥器，右手小心地把盖子稍微推开，等冷空气徐徐进入后，才能完全推开，盖子必须仰放在桌子上。
（4）不可将太热的物体放入干燥器中。
（5）有时较热的物体放入干燥器中后，空气受热膨胀会把盖子顶起来，为了防止盖子被打翻，应当用手按住，不时把盖子稍微推开。
（6）灼烧或烘干后的坩埚和沉淀，在干燥器内不宜放置过久，否则会因吸收一些水分而使质量略有增加。
（7）变色硅胶干燥时为蓝色，受潮后变粉红色。可以在120℃烘受潮的硅胶待其变蓝后反复使用，直至破碎不能用为止。 主词条：盐桥
盐桥常出现在原电池中，是由琼脂和饱和氯化钾或饱和硝酸铵溶液构成的。用来在两种溶液中转移电子。常用于原电池实验，材料：琼脂+饱和氯化钾溶液或饱和硝酸铵溶液。 为了减小液界电位，通常在两种溶液之间连接一个高浓度的电解质溶液作“盐桥”。
作用原理：
在两种溶液之间插入盐桥以代替原来的两种溶液的直接接触，减免和稳定液接电位（当组成或活度不同的两种电解质接触时，在溶液接界处由于正负离子扩散通过界面的离子迁移速度不同造成正负电荷分离而形成双电层，这样产生的电位差称为液体接界扩散电位，简称液接电位），使液接电位减至最小以致接近消除。 防止试液中的有害离子扩散到参比电极的内盐桥溶液中影响其电极电位。
原理：
饱和KCl溶液的浓度高达4.2mol·dm-3，当盐桥插入到浓度不大的两电解质溶液之间的界面时，产生了两个接界面，盐桥中K+和Cl-向外扩散就成为这两个接界面上离子扩散的主流。由于K+和Cl-的扩散速率相近，使盐桥与两个溶液接触产生的液接电势均很小，且两者方向相反，故相互抵消后降至1~2mV。 选择盐桥中的电解质的原则是高浓度、正负离子迁移速率接近相等，且不与电池中溶液发生化学反应。常采用KCl、NH4NO3和KNO3的饱和溶液。

㈧ 卫生部办公厅关于印发《静脉用药集中调配质量管理规范》的通知的静脉用药集中调配操作规程

一、静脉用药调配中心（室）工作流程
临床医师开具静脉输液治疗处方或用药医嘱→用药医嘱信息传递→药师审核→打印标签→贴签摆药→核对→混合调配→输液成品核对→输液成品包装→分病区放置于密闭容器中、加锁或封条→由工人送至病区→病区药疗护士开锁（或开封）核对签收→给患者用药前护士应当再次与病历用药医嘱核对→给患者静脉输注用药。
二、临床医师开具处方或用药医嘱
医师依据对患者的诊断或治疗需要，遵循安全、有效、经济的合理用药原则，开具处方或用药医嘱，其信息应当完整、清晰。
病区按规定时间将患者次日需要静脉输液的长期医嘱传送至静脉用药调配中心（室）。临时静脉用药医嘱调配模式由各医疗机构按实际情况自行规定。
三、审核处方或用药医嘱操作规程
负责处方或用药医嘱审核的药师逐一审核患者静脉输液处方或医嘱，确认其正确性、合理性与完整性。主要包括以下内容。
（一）形式审查：处方或用药医嘱内容应当符合《处方管理办法》、《病例书写基本规范》的有关规定，书写正确、完整、清晰，无遗漏信息。
（二）分析鉴别临床诊断与所选用药品的相符性。
（三）确认遴选药品品种、规格、给药途径、用法、用量的正确性与适宜性，防止重复给药。
（四）确认静脉药物配伍的适宜性，分析药物的相容性与稳定性。
（五）确认选用溶媒的适宜性。
（六）确认静脉用药与包装材料的适宜性。
（七）确认药物皮试结果和药物严重或者特殊不良反应等重要信息。
（八）需与医师进一步核实的任何疑点或未确定的内容。
对处方或用药医嘱存在错误的，应当及时与处方医师沟通，请其调整并签名。因病情需要的超剂量等特殊用药，医师应当再次签名确认。对用药错误或者不能保证成品输液质量的处方或医嘱应当拒绝调配。
四、打印标签与标签管理操作规程
（一）经药师适宜性审核的处方或用药医嘱，汇总数据后以病区为单位，将医师用药医嘱打印成输液处方标签（简称：输液标签）。核对输液标签上患者姓名、病区、床号、病历号、日期，调配日期、时间、有效期，将输液标签按处方性质和用药时间顺序排列后，放置于不同颜色（区分批次）的容器内，以方便调配操作。
（二）输液标签由电脑系统自动生成编号，编号方法由各医疗机构自行确定。
（三）打印输液标签，应当按照《静脉用药集中调配质量管理规范》有关规定采用电子处方系统运作或者采用同时打印备份输液标签方式。输液标签贴于输液袋（瓶）上，备份输液标签应当随调配流程，并由各岗位操作人员签名或盖签章后，保存1年备查。
（四）输液标签内容除应当符合相关的规定外，还应当注明需要特别提示的下列事项：
1.按规定应当做过敏性试验或者某些特殊性质药品的输液标签，应当有明显标识；
2.药师在摆药准备或者调配时需特别注意的事项及提示性注解，如用药浓度换算、非整瓶（支）使用药品的实际用量等；
3.临床用药过程中需特别注意的事项，如特殊滴速、避光滴注、特殊用药监护等。
五、贴签摆药与核对操作规程
（一）摆药前药师应当仔细阅读、核查输液标签是否准确、完整，如有错误或不全，应当告知审方药师校对纠正。
（二）按输液标签所列药品顺序摆药，按其性质、不同用药时间，分批次将药品放置于不同颜色的容器内；按病区、按药物性质不同放置于不同的混合调配区内。
（三）摆药时需检查药品的品名、剂量、规格等是否符合标签内容，同时应当注意药品的完好性及有效期，并签名或者盖签章。
（四）摆药注意事项：
1.摆药时，确认同一患者所用同一种药品的批号相同；
2.摆好的药品应当擦拭清洁后，方可传递入洁净室，但不应当将粉针剂西林瓶盖去掉；
3.每日应当对用过的容器按规定进行整理擦洗、消毒，以备下次使用。
（五）摆药准备室补充药品：
1.每日完成摆药后，应当及时对摆药准备室短缺的药品进行补充，并应当校对；
2.补充的药品应当在专门区域拆除外包装，同时要核对药品的有效期、生产批号等，严防错位，如有尘埃，需擦拭清洁后方可上架；
3.补充药品时，应当注意药品有效期，按先进先用、近期先用的原则；
4.对氯化钾注射液等高危药品应当有特殊标识和固定位置。
（六）摆药核对操作规程：
1.将输液标签整齐地贴在输液袋（瓶）上，但不得将原始标签覆盖；
2.药师摆药应当双人核对，并签名或盖签章；
3.将摆有注射剂与贴有标签的输液袋（瓶）的容器通过传递窗送入洁净区操作间，按病区码放于药架（车）上。
六、静脉用药混合调配操作规程
（一）调配操作前准备：
1.在调配操作前30分钟，按操作规程启动洁净间和层流工作台净化系统，并确认其处于正常工作状态，操作间室温控制于18℃～26℃、湿度40%～65%、室内外压差符合规定，操作人员记录并签名；
2.接班工作人员应当先阅读交接班记录，对有关问题应当及时处理；
3.按更衣操作规程，进入洁净区操作间，首先用蘸有75%乙醇的无纺布从上到下、从内到外擦拭层流洁净台内部的各个部位。
（二）将摆好药品容器的药车推至层流洁净操作台附近相应的位置。
（三）调配前的校对：调配药学技术人员应当按输液标签核对药品名称、规格、数量、有效期等的准确性和药品完好性，确认无误后，进入加药混合调配操作程序。
（四）调配操作程序：
1.选用适宜的一次性注射器，拆除外包装，旋转针头连接注射器，确保针尖斜面与注射器刻度处于同一方向，将注射器垂直放置于层流洁净台的内侧；
2.用75%乙醇消毒输液袋（瓶）的加药处，放置于层流洁净台的中央区域；
3.除去西林瓶盖，用75%乙醇消毒安瓿瓶颈或西林瓶胶塞，并在层流洁净台侧壁打开安瓿，应当避免朝向高效过滤器方向打开，以防药液喷溅到高效过滤器上；
4.抽取药液时，注射器针尖斜面应当朝上，紧靠安瓿瓶颈口抽取药液，然后注入输液袋（瓶）中，轻轻摇匀；
5.溶解粉针剂，用注射器抽取适量静脉注射用溶媒，注入于粉针剂的西林瓶内，必要时可轻轻摇动（或置震荡器上）助溶，全部溶解混匀后，用同一注射器抽出药液，注入输液袋（瓶）内，轻轻摇匀；
6.调配结束后，再次核对输液标签与所用药品名称、规格、用量，准确无误后，调配操作人员在输液标签上签名或者盖签章，标注调配时间，并将调配好的成品输液和空西林瓶、安瓿与备份输液标签及其他相关信息一并放入筐内，以供检查者核对；
7.通过传递窗将成品输液送至成品核对区，进入成品核对包装程序；
8.每完成一组输液调配操作后，应当立即清场，用蘸有75%乙醇的无纺布擦拭台面，除去残留药液，不得留有与下批输液调配无关的药物、余液、用过的注射器和其他物品。
（五）每天调配工作结束后，按本规范和操作规程的清洁消毒操作程序进行清洁消毒处理。
（六）静脉用药混合调配注意事项：
1.不得采用交叉调配流程；
2.静脉用药调配所用的药物，如果不是整瓶（支）用量，则必须将实际所用剂量在输液标签上明显标识，以便校对；
3.若有两种以上粉针剂或注射液需加入同一输液时，应当严格按药品说明书要求和药品性质顺序加入；对肠外营养液、高危药品和某些特殊药品的调配，应当制定相关的加药顺序调配操作规程；
4.调配过程中，输液出现异常或对药品配伍、操作程序有疑点时应当停止调配，报告当班负责药师查明原因，或与处方医师协商调整用药医嘱；发生调配错误应当及时纠正，重新调配并记录；
5.调配操作危害药品注意事项：
（1）危害药品调配应当重视操作者的职业防护，调配时应当拉下生物安全柜防护玻璃，前窗玻璃不可高于安全警戒线，以确保负压；
（2）危害药品调配完成后，必须将留有危害药品的西林瓶、安瓿等单独置于适宜的包装中，与成品输液及备份输液标签一并送出，以供核查；
（3）调配危害药品用过的一次性注射器、手套、口罩及检查后的西林瓶、安瓿等废弃物，按规定由本医疗机构统一处理；
（4）危害药品溢出处理按照相关规定执行。
七、成品输液的核对、包装与发放操作规程
（一）成品输液的检查、核对操作规程：
1.检查输液袋（瓶）有无裂纹，输液应无沉淀、变色、异物等；
2.进行挤压试验，观察输液袋有无渗漏现象，尤其是加药处；
3.按输液标签内容逐项核对所用输液和空西林瓶与安瓿的药名、规格、用量等是否相符；
4.核检非整瓶（支）用量的患者的用药剂量和标识是否相符；
5.各岗位操作人员签名是否齐全，确认无误后核对者应当签名或盖签章；
6.核查完成后，空安瓿等废弃物按规定进行处理。
（二）经核对合格的成品输液，用适宜的塑料袋包装，按病区分别整齐放置于有病区标记的密闭容器内，送药时间及数量记录于送药登记本。在危害药品的外包装上要有醒目的标记。
（三）将密闭容器加锁或加封条，钥匙由调配中心和病区各保存一把，配送工人及时送至各病区，由病区药疗护士开锁或启封后逐一清点核对，并注明交接时间，无误后，在送药登记本上签名。
八、静脉用药调配所需药品与物料领用管理规程
（一）药品、物料的请领、保管与养护应当有专人负责。
（二）药品的请领：
1.静脉用药调配中心（室）药品的请领应当根据每日消耗量，填写药品请领单，定期向药库请领，药品请领单应当有负责人或指定人员签名；
2.静脉用药调配中心（室）不得调剂静脉用药调配以外的处方；
3.静脉用药调配中心（室）不得直接对外采购药品，所需的药品一律由药学部门药品科（库）统一采购供应。
（三）药品的验收：
1.负责二级药库管理的药师应当依据药品质量标准、请领单、发药凭证与实物逐项核对，包括品名、规格、数量及有效期是否正确，药品标签与包装是否整洁、完好，核对合格后，分类放置于相应的固定货位，并在发药凭证上签名；
2.凡对药品质量有质疑、药品规格数量不符、药品过期或有破损等，应当及时与药品科（库）沟通，退药或更换，并做好记录。
（四）药品的储存管理与养护：
1.药库应当干净、整齐，地面平整、干燥，门与通道的宽度应当便于搬运药品和符合防火安全要求；药品储存应当按“分区分类、货位编号”的方法进行定位存放，按药品性质分类集中存放；对高危药品应设置显著的警示标志；并应当做好药库温湿度的监测与记录；
2.药库具备确保药品与物料储存要求的温湿度条件：常温区域10℃～30℃，阴凉区域不高于20℃，冷藏区域2℃～8℃，库房相对湿度40%～65%；
3.药品堆码与散热或者供暖设施的间距不小于30厘米，距离墙壁间距不少于20厘米，距离房顶及地面间距不小于10厘米；
4.规范药品堆垛和搬运操作，遵守药品外包装图示标志的要求，不得倒置存放；
5.每种药品应当按批号及有效期远近依次或分开堆码并有明显标志，遵循“先产先用”、“先进先用”、“近期先用”和按批号发药使用的原则；
6.对不合格药品的确认、报损、销毁等应当有规范的制度和记录。
（五）已建立医院信息系统的医疗机构，应当建立电子药品信息管理系统，药品存量应当与一级库建立电子网络传递联系，加强药品成本核算和账务管理制度。
（六）静脉用药调配中心（室）所用药品应当做到每月清点，账物相符，如有不符应当及时查明原因。
（七）注射器和注射针头等物料的领用、管理应当按本规范的有关规定和参照药品请领、验收管理办法实施，并应当与药品分开存放。
九、电子信息系统调配静脉用药规程
（一）电子信息系统静脉用药调配流程：
1.由医师按照《处方管理办法》和《电子病历基本规范（试行）》有关规定，负责将患者处方或用药医嘱分组录入电脑；
2.将静脉输液医嘱直接传递至静脉用药调配中心（室）；
3．经药师审核处方或用药医嘱的适宜性后，自动生成输液标签及备份输液标签或采用电子处方信息系统记录，上述标签或记录均应当有各道工序操作人员的信息。
（二）建立电子药品信息管理系统。处方或用药医嘱打印成输液标签，并在完成调配操作流程后，自动减去处方组成药品在二级库所存药品数量，做到账物相符，并自动形成药品月收支结存报表。
十、静脉用药调配中心（室）人员更衣操作规程
（一）进出静脉用药调配中心（室）更衣规程。进出静脉用药调配中心（室）应当更换该中心（室）工作服、工作鞋并戴发帽。非本中心（室）人员未经中心（室）负责人同意，不得进入。
（二）进入十万级洁净区规程（一更）：
1.换下普通工作服和工作鞋，按六步手清洁消毒法消毒手并烘干；
2.穿好指定服装并戴好发帽、口罩。
（三）进入万级洁净区规程（二更）：
1.更换洁净区专用鞋、洁净隔离服；
2.手消毒，戴一次性手套。
（四）离开洁净区规程：
1.临时外出：在二更室脱下洁净隔离服及帽子、口罩整齐放置，一次性手套丢入污物桶内；在一更室应当更换工作服和工作鞋；
2.重新进入洁净区时，必须按以上更衣规定程序进入洁净区；
3.当日调配结束时，脱下的洁净区专用鞋、洁净隔离服进行常规消毒，每周至少清洗2次；一次性口罩、手套一并丢入污物桶。
十一、静脉用药调配中心（室）清洁、消毒操作规程
（一）地面消毒剂的选择与制备：
1.次氯酸钠，为5%的强碱性溶液，用于地面消毒为1%溶液，本溶液须在使用前新鲜配制，处理/分装高浓度5%次氯酸钠溶液时，必须戴厚口罩和防护手套；
2.季铵类阳离子表面活性剂，有腐蚀性；禁与肥皂水及阴离子表面活性剂联合使用，应当在使用前新鲜配制；
3.甲酚皂溶液，有腐蚀性，用于地面消毒为5%溶液， 应当在使用前新鲜配制。
（二）静脉用药调配中心（室）清洁与卫生管理其他规定：
1.各操作室不得存放与该室工作性质无关的物品，不准在静脉用药调配中心（室）用餐或放置食物；
2.每日工作结束后应当及时清场，各种废弃物必须每天及时处理。
（三）非洁净区的清洁、消毒操作程序：
1.每日工作结束后，用专用拖把擦洗地面，用常水擦拭工作台、凳椅、门框及门把手、塑料筐等；
2.每周消毒一次地面和污物桶：先用常水清洁，待干后，再用消毒液擦洗地面及污物桶内外，15分钟以后再用常水擦去消毒液；
3.每周一次用75%乙醇擦拭消毒工作台、成品输送密闭容器、药车、不锈钢设备、凳椅、门框及门把手。
（四）万级洁净区清洁、消毒程序：
1.每日的清洁、消毒：调配结束后，用常水清洁不锈钢设备，层流操作台面及两侧内壁，传递窗顶部、两侧内壁、把手及台面，凳椅，照明灯开关等，待挥干后，用75%乙醇擦拭消毒；
2.每日按规定的操作程序进行地面清洁、消毒；
3.墙壁、顶棚每月进行一次清洁、消毒，操作程序同上。
（五）清洁、消毒注意事项：
1.消毒剂应当定期轮换使用；
2.洁净区和一般辅助工作区的清洁工具必须严格分开，不得混用；
3.清洁、消毒过程中，不得将常水或消毒液喷淋到高效过滤器上；
4.清洁、消毒时，应当按从上到下、从里向外的程序擦拭，不得留有死角；
5.用常水清洁时，待挥干后，才能再用消毒剂擦拭，保证清洁、消毒效果。
十二、生物安全柜的操作规程
生物安全柜属于垂直层流台，通过层流台顶部的高效过滤器，可以过滤99.99%的0.3μm以上的微粒，使操作台空间形成局部100级的洁净环境，并且通过工作台面四周的散流孔回风形成相对负压，因此，不应当有任何物体阻挡散流孔，包括手臂等。用于调配危害药品的生物安全柜，应当加装活性炭过滤器用于过滤排出的有害气体。
（一）清洁与消毒：
1.每天在操作开始前，应当使用75%的乙醇擦拭工作区域的顶部、两侧及台面，顺序应当从上到下，从里向外；
2．在调配过程中，每完成一份成品输液调配后，应当清理操作台上废弃物，并用常水擦拭，必要时再用75%的乙醇消毒台面；
3.每天操作结束后，应当彻底清场，先用常水清洁，再用75%乙醇擦拭消毒；
4.每天操作结束后应当打开回风槽道外盖，先用蒸馏水清洁回风槽道，再用75%乙醇擦拭消毒。
（二）生物安全柜的操作与注意事项：
1.有1至2位调配人员提前半小时先启动生物柜循环风机和紫外线灯，关闭前窗至安全线处，30分钟后关闭紫外线灯，然后用75%乙醇擦拭生物安全柜顶部、两侧及台面，顺序为从上到下、从里到外进行消毒，然后打开照明灯后方可进行调配；
2.紫外线灯启动期间，不得进行调配，工作人员应当离开操作间；
3.紫外线灯应当定期检测，如达不到灭菌效果时，应当及时更换灯管；
4.所有静脉用药调配必须在离工作台外沿20厘米，内沿8～10厘米，并离台面至少10厘米区域内进行；
5.调配时前窗不可高过安全警戒线，否则，操作区域内不能保证负压，可能会造成药物气雾外散，对工作人员造成伤害或污染洁净间；
6.生物安全柜的回风道应当定期用蒸馏水擦拭清洁后，再用75%乙醇消毒；
7.生物安全柜每月应当做一次沉降菌监测，方法：将培养皿打开，放置在操作台上半小时，封盖后进行细菌培养，菌落计数；
8.生物安全柜应当根据自动监测指示，及时更换过滤器的活性炭。
（三）每年应当对生物安全柜进行各项参数的检测，以保证生物安全柜运行质量，并保存检测报告。
十三、水平层流洁净台操作规程
（一）物品在水平层流洁净台的正确放置与操作，是保证洁净台工作质量的重要因素。从水平层流洁净台吹出来的空气是经过高效过滤器过滤，可除去99.99% 直径0.3mm以上的微粒，并确保空气的流向及流速。用于静脉用药调配操作的水平层流台的进风口应当处于工作台的顶部，这样可保证最洁净的空气先进入工作台，工作台的下部支撑部分可确保空气流通。此类层流洁净台只能用于调配对工作人员无伤害的药物，如电解质类药物、肠外营养药等。
（二）清洁与消毒：
1.每天在操作开始前，有1至2位调配人员提前启动水平层流台循环风机和紫外线灯， 30分钟后关闭紫外灯，再用75%乙醇擦拭层流洁净台顶部、两侧及台面，顺序为从上到下，从里向外进行消毒；然后打开照明灯后方可进行调配；
2.在调配过程中，每完成一份成品输液调配后，应当清理操作台上废弃物，并用常水清洁，必要时再用75%的乙醇消毒台面；
3.每天调配结束后，应当彻底清场，先用常水清洁，再用75%乙醇擦拭消毒。
（三）水平层流洁净台的操作与注意事项：
1.水平层流洁净台启动半小时后方可进行静脉用药调配；
2.应当尽量避免在操作台上摆放过多的物品，较大物品之间的摆放距离宜约为15厘米；小件物品之间的摆放距离约为5厘米；
3.洁净工作台上的无菌物品应当保证第一时间洁净的空气从其流过，即物品与高效过滤器之间应当无任何物体阻碍，也称“开放窗口”；
4.避免任何液体物质溅入高效过滤器，高效过滤器一旦被弄湿，很容易产生破损及滋生霉菌；
5.避免物体放置过于靠近高效过滤器，所有的操作应当在工作区内进行，不要把手腕或胳膊肘放置在洁净工作台上，随时保持“开放窗口”；
6.避免在洁净间内剧烈的动作，避免大声喧哗，应当严格遵守无菌操作规则；
7.水平层流洁净台可划分为3个区域：
（1）内区，最靠近高效过滤器的区域，距离高效过滤器10～15厘米，适宜放置已打开的安瓿和其他一些已开包装的无菌物体；
（2）工作区，即工作台的中央部位，离洁净台边缘10～15厘米，所有的调配应当在此区域完成；
（3）外区，从台边到15～20厘米距离的区域，可用来放置有外包装的注射器和其他带外包装的物体（应尽量不放或少放）。
8.安瓿用砂轮切割和西林瓶的注射孔盖子打开后，应当用75%乙醇仔细擦拭消毒，去除微粒，打开安瓿的方向应当远离高效过滤器；
9.水平层流洁净台每周应当做一次动态浮游菌监测，方法：将培养皿打开，放置在操作台上半小时，封盖后进行细菌培养，菌落计数。
（四）每年应对水平层流洁净台进行各项参数的检测，以保证洁净台运行质量，并保存检测报告。
十四、其他
医疗机构开展其他集中或者分散的临床静脉用药调配，参照以上各项有关操作规程执行，具体实施规程由各医疗机构负责制定。

㈨ 卧室灯坏了，但是蒸馏器和灯管没问题，请问怎么办

是不是开关坏了，再就是线有问题吧，