㈠ 關於向心力、離心現象的疑惑
不矛盾呀。。。
加速，衛星做離心運動，軌道半徑增大，
上升過程中，引力勢能會增加，動能減小，到達一個新的高度達到穩定。
從能量守恆角度看，關鍵是 引力勢能增加了 。。。
㈡ 超濾離心管放一般的離心機能用么
般的離心機有兩種轉子,一種是吊籃式的轉子,一種是角轉子.當然兩種都可以用來轉超濾管濃縮,不過角轉子效率會差很多,就是你離心時間長但濃縮體積還是不大.吊籃轉子效率比較高一些.
㈢ 離心管和離心超濾管分別是做什麼用的,這個兩個有什麼區別!
離心管就是一個簡單的可以承受高轉速壓力的管子,比如離一些樣品,分離出上清沉澱專.離心超濾管會有一個屬類似於內管和外管的兩個部分,內管中是帶有一定分子量的膜,當高速離心時,分子量比它小的就漏到下面的管子（即外管）中了,分子量比它大的就截留在上面（即內管中）,就是超濾的原理.常用於濃縮樣品.
㈣ 關於向心力和離心力的幾個問題
1.向心力公式是F=(mv^2)r和F=mrw^2，
這個公式的推導我就不說了，用通俗點的語言給你來回答吧,希望你好理解些.
F=(mv^2)r
其中F是向心力.向心力是什麼呢? 通俗點來說就是要讓一個物體保持做圓周運動而不沿著切線方向飛出去所需要的力. 這個公式里有m v r三個參數. 怎麼去理解呢?
給你舉個實例來說明吧:
有一輛小汽車通過一個拱橋,小汽車的質量是m,速度是v,拱橋的半徑是r. 小汽車要以一定的速度開過拱橋(這是一部分的圓周運動)吧而不飛起來. 需要怎麼樣的條件呢?
請看公式, m越大，F越大. v越大,F也越大.這就是說,如果汽車質量m越大, 開的時候慣性就越大，越容易在過拱橋時離地而飛起. 汽車開的速度v越快，車也越容易飛起.這時,所需要的向心力F就越大，也就是說如果向心力太小的話，很重的，速度快的汽車就會在過拱橋時脫離地面,沿切線方向飛出.
再看公式,r越小,F越大,這就是說.拱橋的半徑r越小，弧度就越大，你想想,比起水平的地面,在上一個特別彎的拱橋的時候,車是不是更容易飛起呢? 這時需要的向心力F也越大.
注意:向心力並不是物體直接受到的力,而是一個物體做保持圓周運動所"需要"的力.在這個例子中,汽車只受到2個力,重力和橋對車的支持力.重力減去支持力就等於車所"需要"的向心力. 不同的車,不同的速度,和不同橋的半徑,車受到的支持力就不一樣.從而導致"重力-支持力=所需要的向心力"也不一樣.
我想這么說，希望更能加深你的理解吧.
至於公式F=mrw^2,是由第一個公式推出來的
2.靜摩擦力
3.一個是鐵的一個是橡膠的..
（應該是軌道吧，按照我國交通規則，汽車、行人要靠右走。但是人們發現，雙軌火車是靠左行的，這是為什麼呢？ 人們知道，地球近似球體，自西向東轉，周期為9.64×10.4秒，赤道附近的線速度約每秒460米，南北兩極的軸心的速度幾乎為零。我國地處北半球，當兩列火車相遇時，火車靠左行，西邊軌道上的火車受的力向西，東邊軌道上的火車受的力向東，由於它們受的力都向外側，火車才不會相撞。反之，如果火車靠右行，火車受的力都向內側，當兩列火車相遇時，很可能有相撞的危險，雙軌火車靠左行的道理就在這里。 ）
4.離心運動是遠離圓心的運動.圓周運動是質點在以某點為圓心半徑為r的圓周上運動時，即其軌跡是圓周的運動叫「圓周運動」。它是一種最常見的曲線運動.
㈤ 超濾離心管用材要求
摘要 （1）選擇合適的超濾離心管。通常應截留分子量不應大於目的蛋白分子量的1/3，比如目的蛋白分子量為35kDa，就可以選擇10kDa截留分子量的產品。若目的蛋白分子量為10kD左右，則可以用截留分子量3kD的超濾管。認真閱讀使用說明書，注意超濾膜對各種化學物質的耐受程度有所不同。
㈥ 想問一下超濾離心管怎麼使用啊還有它能不能重復使用
可以的,先用超聲波洗干凈,再用高壓滅菌鍋滅菌後,備用即可
㈦ 超濾離心管怎麼使用
蛋白濃縮和換Buffer通常使用的超濾管，常用Millipore的Amicon-Ultra-15超濾管（MWCO10kD）。也有其它型號的、不同體積大小和MWCO超濾管可選，視目的蛋白的分子量與濃縮前體積、濃縮目標體積而定。可重復使用。
1、選擇合適的超濾管，主要考慮MWCO和濃縮體積，通常應截留分子量不應大於目的蛋白分子量的1/3，比如目的蛋白分子量為35kDa，就可以選擇10kDa截留分子量的超濾管。若目的蛋白分子量為10kD左右，則可以用截留分子量3kD的超濾管。
2、新買來的超濾是乾燥的，使用前加入MilliQ水，水量完全過膜，冰浴或冰箱里預冷幾分鍾。然後將水倒出，即可加入蛋白液，加入的多少，以不超過管頂的白線為准。操作要輕，加入蛋白液前，超濾管需要插在冰上預冷。
3、平衡。質量和重心二者都要達到平衡。注意轉速和加速度不可太快，否則直接損壞超濾膜。開始離心超濾（離心機預冷至4度）。膜與轉軸的方向根據說明書調整（角轉離心機的情況是膜與軸垂直）。在實際使用中，一般轉速開的比說明書里的要低，這樣可以延長離心管的使用壽命。
4、當濃縮到剩下1ml時，【取50ul國產Bradford溶液，加入10ul流穿，看有沒變藍色，以此判斷超濾管是否漏掉蛋白。如果管漏了，將上層和流穿重新倒入新管中開始超濾。要精確判斷是否漏管，用5mg/ml的BSA離心10min，再取流穿，跑蛋白膠或Bradford粗測】，繼續加入剩下的蛋白液濃縮（在冰上操作，防止蛋白受熱），直到所有濃縮液都加完為止。離心過程中注意是否發生蛋白沉澱，導致堵管。若發生沉澱，要確定沉澱的具體原因，是蛋白濃度過高還是Buffer不合適；前者可用多根超濾管同時超濾，降低濃度的辦法解決，後者的方法是換不同的Buffer，直到蛋白不發生沉澱為止。
5、前面幾步用以濃縮蛋白，如果要換Buffer，在總蛋白液濃縮至1ml左右的時候，輕輕加入新的Buffer（經0.22um超濾膜超濾），再濃縮至1ml左右，連續三次，最後一次的濃縮終體積根據需要的蛋白濃度而定，一般不多於500ul，也有濃縮至200ul以內的情況。按照每次至少10倍左右的體積濃縮算，三次達到1000倍以上，基本上可以達到換buffer的目的。
6、取出最終蛋白濃縮液的操作在冰上操作，用黃槍頭（200ul）取，輕輕順著邊緣插入槍頭，輕輕吹打、混勻蛋白液，注意不要碰到超濾膜，然後吸取濃縮液，每次吸接近200ul，直到吸完。管底剩下的最後一點濃縮液不必吸取，否則難度太大，有可能損壞超濾膜。最後加入MilliQ水到超濾管中，沒過超濾膜，防止膜失水變干。
7、以下是處理超濾管，重復利用超濾管的步驟。
8、倒出超濾管里的水，用milliQ水輕輕潤洗幾次，【若管底有可見的蛋白沉澱，可以先加入水，然後用槍頭吹打，注意不要碰到膜，吹打至沉澱懸起，然後倒掉，不可用自來水猛沖】然後加入0.2M的NaOH溶液，室溫放置20min，期間平衡超濾管。再離心10min。倒出殘留的NaOH溶液，將管芯浸入MilliQ水的燒杯(1或2L)中,放置幾個小時,再換新的水,放置幾個小時，不斷稀釋NaOH濃度。50ml管和蓋子用自來水洗，內壁再用MilliQ水洗干凈。
9、取出浸沒的管芯，加至接近滿的MilliQ水，50ml管也加滿MilliQ水，將管芯慢慢放入50ml
離心管，排出部分水，然後蓋上蓋子，放4度保存，直到下次使用。一般來說，按照上述步驟和注意事項，每根管用三四年不會壞。
㈧ 超濾濃縮離心管使用前要怎麼處理
可能不來同廠家的產品保存運輸條源件不一樣。
如果有甘油等保護劑，那就一定要洗干凈再加樣品。
乾的超濾管也要先潤濕再用，否則可能不能完全利用膜面積。
最好，用樣品buffer潤洗下再加樣，最大程度保證蛋白活性。尤其是用過後保存在NaOH或乙醇中後。
一般還是離心機甩一下好，使膜充分浸潤。
降低吸附的辦法有：
1，蛋白濃度不要過低
2，盡量選用纖維素的低吸附超濾管
3，用前可以用Tween 80等去垢劑潤洗（不影響蛋白活性的前提下）
4，加入保護蛋白，如BSA(不影響蛋白後續使用的前提下)
用完保存在20% EtOH中，4C保存，防止長菌，依不同樣品可以重復使用不同的次數。
㈨ 離心管和離心超濾管
離心管就來是一個簡單的可自以承受高轉速壓力的管子，比如離一些樣品，分離出上清沉澱。
離心超濾管會有一個類似於內管和外管的兩個部分，內管中是帶有一定分子量的膜，當高速離心時，分子量比它小的就漏到下面的管子（即外管）中了，分子量比它大的就截留在上面（即內管中），就是超濾的原理。。。。常用於濃縮樣品。