1ml的超濾管使用

Ⅰ 超濾離心管用材要求

摘要 （1）選擇合適的超濾離心管。通常應截留分子量不應大於目的蛋白分子量的1/3，比如目的蛋白分子量為35kDa，就可以選擇10kDa截留分子量的產品。若目的蛋白分子量為10kD左右，則可以用截留分子量3kD的超濾管。認真閱讀使用說明書，注意超濾膜對各種化學物質的耐受程度有所不同。

Ⅱ 想問一下超濾離心管怎麼使用啊還有它能不能重復使用

可以的,先用超聲波洗干凈,再用高壓滅菌鍋滅菌後,備用即可

Ⅲ 超濾管能用於強鹼或強酸溶液的超濾嗎

1、選擇合適的超濾管，主要考慮MWCO和濃縮體積，最常見的是Ultra-15（10kD）。
通常應截留分子量版不應大於目的蛋白分子量的權1/3，比如目的蛋白分子量為35kDa，就可以選擇10kDa截留分子量的超濾管。
若目的蛋白分子量為10kD左右，則可以用截留分子量3kD的超濾管。
認真閱讀使用說明書，注意超濾膜對各種化學物質的耐受程度有所不同，表格中有。
2、新買來的超濾是乾燥的，使用前加入MilliQ水，水量完全過膜，冰浴或冰箱里預冷幾分鍾。
然後將水倒出，即可加入蛋白液，加入的多少，以不超過管頂的白線為准。
操作要輕，加入蛋白液前，超濾管需要插在冰上預冷。
3、平衡。
質量和重心二者都要達到平衡。
注意轉速和加速度不可太快，否則直接損壞超濾膜。
注意，一定要等離心機達到目的轉速之後，方可離開
離心機，否則離心機出問題時，無法第一時間處理，後果不可預測。
膜與轉軸的方向根據說明書調整（角轉離心機的情況是膜與軸垂直）。
在實際使用中，一般轉速開的比說明書里的要低，這樣可以延長離心管的使用壽命。

Ⅳ 吸量管的使用方法及注意事項有哪些

用右手的拇指和中指捏住移液管的上端，將管的下口插入欲吸取的溶液中，插入不要太淺或太深，一般為10～20mm處，太淺會產生吸空，把溶液吸到洗耳球內弄臟溶液，太深又會在管外沾附溶液過多。

左手拿洗耳球，先把球中空氣壓出，再將球的尖嘴接在移液管上口，慢慢松開壓扁的洗耳球使溶液吸入管內，先吸入該管容量的1/3左右，用右手的食指按住管口，取出，橫持，並轉動管子使溶液接觸到刻度以上部位，以置換內壁的水分，然後將溶液從管的下口放出並棄去，如此用反復洗3次後，即可吸取溶液至刻度以上，立即用右手的食指按住管口。

在使用完畢後，應立即用自來水及蒸餾水沖洗干凈，置於移液管架上，移液管和容量瓶常配合使用，因此在使用前常作兩者的相對體積校準。

吸量管的特點

吸量管為刻度吸管，具有分刻度的玻璃管。經常用到的吸管有1ml、2ml、5ml、10ml等規格。

用移液管或吸量管移取溶液前，用濾紙將尖端內外的水吸去，然後用欲移取的溶液涮洗2-3次，以確保所移取溶液濃度不變。

對於黏度大的液體，由於管內壁殘留很多，所以一般是管上標記的刻度是管內的全部體積。一般在吸液後要用溶劑沖洗移液管內壁，所以內容量移液管的刻度所標示的體積要比常用的外容量式的略小。

以上內容參考網路-吸量管

Ⅳ 離心管和離心超濾管分別是做什麼用的,這個兩個有什麼區別!

離心管就是一個簡單的可以承受高轉速壓力的管子,比如離一些樣品,分離出上清沉澱專.離心超濾管會有一個屬類似於內管和外管的兩個部分,內管中是帶有一定分子量的膜,當高速離心時,分子量比它小的就漏到下面的管子（即外管）中了,分子量比它大的就截留在上面（即內管中）,就是超濾的原理.常用於濃縮樣品.

Ⅵ 超濾離心管怎麼使用

蛋白濃縮和換Buffer通常使用的超濾管，常用Millipore的Amicon-Ultra-15超濾管（MWCO10kD）。也有其它型號的、不同體積大小和MWCO超濾管可選，視目的蛋白的分子量與濃縮前體積、濃縮目標體積而定。可重復使用。
1、選擇合適的超濾管，主要考慮MWCO和濃縮體積，通常應截留分子量不應大於目的蛋白分子量的1/3，比如目的蛋白分子量為35kDa，就可以選擇10kDa截留分子量的超濾管。若目的蛋白分子量為10kD左右，則可以用截留分子量3kD的超濾管。
2、新買來的超濾是乾燥的，使用前加入MilliQ水，水量完全過膜，冰浴或冰箱里預冷幾分鍾。然後將水倒出，即可加入蛋白液，加入的多少，以不超過管頂的白線為准。操作要輕，加入蛋白液前，超濾管需要插在冰上預冷。
3、平衡。質量和重心二者都要達到平衡。注意轉速和加速度不可太快，否則直接損壞超濾膜。開始離心超濾（離心機預冷至4度）。膜與轉軸的方向根據說明書調整（角轉離心機的情況是膜與軸垂直）。在實際使用中，一般轉速開的比說明書里的要低，這樣可以延長離心管的使用壽命。
4、當濃縮到剩下1ml時，【取50ul國產Bradford溶液，加入10ul流穿，看有沒變藍色，以此判斷超濾管是否漏掉蛋白。如果管漏了，將上層和流穿重新倒入新管中開始超濾。要精確判斷是否漏管，用5mg/ml的BSA離心10min，再取流穿，跑蛋白膠或Bradford粗測】，繼續加入剩下的蛋白液濃縮（在冰上操作，防止蛋白受熱），直到所有濃縮液都加完為止。離心過程中注意是否發生蛋白沉澱，導致堵管。若發生沉澱，要確定沉澱的具體原因，是蛋白濃度過高還是Buffer不合適；前者可用多根超濾管同時超濾，降低濃度的辦法解決，後者的方法是換不同的Buffer，直到蛋白不發生沉澱為止。
5、前面幾步用以濃縮蛋白，如果要換Buffer，在總蛋白液濃縮至1ml左右的時候，輕輕加入新的Buffer（經0.22um超濾膜超濾），再濃縮至1ml左右，連續三次，最後一次的濃縮終體積根據需要的蛋白濃度而定，一般不多於500ul，也有濃縮至200ul以內的情況。按照每次至少10倍左右的體積濃縮算，三次達到1000倍以上，基本上可以達到換buffer的目的。
6、取出最終蛋白濃縮液的操作在冰上操作，用黃槍頭（200ul）取，輕輕順著邊緣插入槍頭，輕輕吹打、混勻蛋白液，注意不要碰到超濾膜，然後吸取濃縮液，每次吸接近200ul，直到吸完。管底剩下的最後一點濃縮液不必吸取，否則難度太大，有可能損壞超濾膜。最後加入MilliQ水到超濾管中，沒過超濾膜，防止膜失水變干。
7、以下是處理超濾管，重復利用超濾管的步驟。
8、倒出超濾管里的水，用milliQ水輕輕潤洗幾次，【若管底有可見的蛋白沉澱，可以先加入水，然後用槍頭吹打，注意不要碰到膜，吹打至沉澱懸起，然後倒掉，不可用自來水猛沖】然後加入0.2M的NaOH溶液，室溫放置20min，期間平衡超濾管。再離心10min。倒出殘留的NaOH溶液，將管芯浸入MilliQ水的燒杯(1或2L)中,放置幾個小時,再換新的水,放置幾個小時，不斷稀釋NaOH濃度。50ml管和蓋子用自來水洗，內壁再用MilliQ水洗干凈。
9、取出浸沒的管芯，加至接近滿的MilliQ水，50ml管也加滿MilliQ水，將管芯慢慢放入50ml
離心管，排出部分水，然後蓋上蓋子，放4度保存，直到下次使用。一般來說，按照上述步驟和注意事項，每根管用三四年不會壞。

Ⅶ 如何選擇超濾管

你看你要截留那部分物質，就選擇比最小分子量小的，如果你要截留26KD的，你要的超濾管內就要比26小。但兩者也要有一定容的差距，比如，選擇20-25KD之間的就不合適，因為26的也可能會出去（這是由製造工藝決定的）。所以選擇20KD以下的超濾管比較合適。

Ⅷ 吸量管如何吸取1ml溶液，吸到最大刻度在放出1ml

用洗耳球吸起溶液，使液面略高出刻度，食指堵住。輕移食指讓液面緩慢降低至刻度。

Ⅸ 大家用過的超濾管怎麼保存

超濾膜組件的維護（四川禹華環保）要點：
一、短期停機的情況下：停機2-3天以內，請內在膜組件內部充水容的狀態下停機；如果達一周左右時，請注入濃度為50mg/L的次氯酸鈉溶液；
二、 長期停機的情況下：膜組件要先經過次氯酸鈉葯洗後，再注入濃度為1.5%的亞硫酸氫鈉溶液。
三、置於陰涼處，不能脫水存放；低於零度時要加甘油防凍；

Ⅹ 求助：第一次使用超濾離心管應該怎麼處理

可能不同廠家的產品保存運輸條件不一樣。
如果有甘油等保護劑，那就一定要洗干凈再加樣品。版權
乾的超濾管也要先潤濕再用，否則可能不能完全利用膜面積。
最好，用樣品buffer潤洗下再加樣，最大程度保證蛋白活性。尤其是用過後保存在NaOH或乙醇中後。
一般還是離心機甩一下好，使膜充分浸潤。

降低吸附的辦法有：
1，蛋白濃度不要過低
2，盡量選用纖維素的低吸附超濾管
3，用前可以用Tween 80等去垢劑潤洗（不影響蛋白活性的前提下）
4，加入保護蛋白，如BSA(不影響蛋白後續使用的前提下)

用完保存在20% EtOH中，4C保存，防止長菌，依不同樣品可以重復使用不同的次數。