Ⅰ 大棗沒有烘乾能不能磨成粉
家庭用家用磨粉機需要完全烘乾，否則大棗含糖較高，有一定的粘度，無法磨粉。
工業製作棗粉不需要烘乾。
工業棗粉工藝流程：
紅棗→洗果→浸泡→預煮→打漿→精磨→提取→分離→酶解→滅酶→分離→無機膜過濾→殺菌→濃縮→配料→殺菌→噴霧乾燥→包裝→成品
1工序： 原輔料驗收
紅棗質檢員按照標准對紅棗進行檢驗、將檢驗合格的紅棗收入果槽，不合格的紅棗實行出廠分揀至合格再行收購或拒收。
無菌袋、液袋或罐箱及酶制劑等輔料進廠後，檢驗合格後允許入庫。包裝材料常溫貯存，使用時依照先進先出的原則；酶制劑存放在0~5℃的冷藏庫中，使用時依照先進先出的原則。清洗材料、消毒劑等輔料進廠後，檢驗合格後入庫，分類存放並做明確的標識。
2工序：果槽
將驗收合格的紅棗按果槽號逐次輕卸入果槽，要求紅棗中無繩頭，包裝物等雜物，並做好各果槽紅棗貯量記錄。車間生產時，按照果槽進貨的先後順序，遵循先進先出的原則正確使用果糟中的紅棗。果槽及周邊環境衛生由裝卸工負責，每天必須沖冼，並保持全天干凈衛生，當班紅棗質檢負責落實。
3工序：一級輸送清洗
用一級坑循環水將紅棗從果槽輸送至一級坑處，在這個流通過程中使紅棗得到充分的浸泡、清洗，同時比重大的一些物質（泥沙、石塊、金屬等）沉入沉降坑中，經過隔柵，將水和紅棗分離，紅棗進入二級輸送果道，水流入一級循環池，由泵繼續打入果槽循環輸送紅棗。
4工序：二級輸送清洗
用二級坑循環水將紅棗從二級輸送果道始端輸送至二級坑處，在這個流通過程中使紅棗得到充分的浸泡、清洗，經過隔柵，將水和紅棗分離，紅棗進入一級提升工序，水流入二級坑循環池，由泵繼續打入二級輸送果道始端循環輸送紅棗。二級坑的循環水每天開機時使用自來水，生產過程中，根據二級循環水池的水位，將處理過的軟化水不斷的補二級循環水池，二級循環水池多餘的循環水進入一級坑，保持二級坑循環水的干凈衛生。
5工序：一級提升
用一級螺旋提升機將紅棗提升至揀選台。通過調節提升機變速箱調節原料進料量，以保證生產需要。
6工序：揀選
在揀選台上隨著紅棗的滾動將霉爛果變質果、雜質揀選挑出，此工序保證揀選之後爛果率控制在2%以下，選果台上的紅棗成單層擺放，每個選果台保證每平方米1人以上選果人員。揀選班長每2小時監測爛果率，並做記錄。揀選後的原料果進入三級輸送清洗工序。
7工序：爛果輸送
將揀選台撿出的爛紅棗等雜質用螺旋提升機輸送出車間，作為非食品用。
8工序：浮洗
在這個流通過程中使紅棗在浮洗機中隨水流動翻轉，得以充分的浸泡、清洗後，紅棗進入消毒池。
9工序：二級提升
在浮洗機末端，用提升機將原料果輸送到滾杠輸送機，清洗水用泵打回浮洗機繼續循環，同時將清洗水與原料果分離。
10工序：消毒
在消毒池中，使用消毒劑（一般是二氧化氯）主要殺死紅棗表面的耐酸耐熱菌和一些微生物。
11工序：滾杠噴淋清洗
原料果在滾杠輸送機上用高壓噴淋水沖洗。
12工序：三級提升
用三級提升機將紅棗提升至破碎機。
13工序：破碎
將清洗干凈的紅棗用破碎機破碎為4-6mm（依紅棗成熟度調整破碎粒度，前期果硬度大，破碎粒度小，儲存果糖化，破碎粒度大）的果漿，要求分前、中、後三期更換破碎機篩網，分別用小、中、大篩網。根據紅棗的成熟度決定是否添加果漿酶及其加量或臨時工藝通知單。果漿用泵通過不銹鋼管道輸送進入果漿加熱器。
14工序：果漿加熱
果漿經過果漿加熱器，使果漿的溫度升溫到20-35度，以利於果漿酶分解和壓榨，提高出汁率。果漿加熱器的使用根據果漿的溫度而定。
15工序：果漿暫存
果漿在加熱、加酶後用泵經管道打入果漿罐中，保留一定時間使果漿充分酶化，提高出汁率。果漿罐為2個，一個罐中果漿進行酶解，另一個保證正常生產，酶化時間必須大於30分鍾。
16工序：壓榨
使用榨機對破碎後的果漿進行壓榨，壓榨後果汁進入一級過濾工序，果渣在本機內進行加水萃取並進行二級壓榨。
17工序：一級過濾
將壓榨出的果汁通過旋轉過濾篩除去較大顆粒的非水溶性果肉、果渣，透過的果汁進入第一次巴氏滅菌工序，每天清洗時肉眼目視檢查一次一級過濾篩網的完整性，並做記錄。
18工序：果渣排放
二級壓榨後的果渣由螺旋輸送器送出車間，連續排放，運出工廠作為非食品用途（飼料等）.
19工序：生汁暫存
經過一級過濾的生汁用泵輸送至生汁暫存罐.
20工序：前巴氏殺菌
果汁在98±2℃（或根據臨時工藝通知單執行）的巴氏滅菌裝置中維持30秒殺滅細菌（但不能殺死芽孢）、使紅棗中固有的酶失活，使紅棗中含有的澱粉糊化，前巴氏殺菌後的果汁經管道進入冷卻板片迅速降溫至50-53℃後由管道送至酶解澄清罐。
21工序：酶解澄清
果汁在果膠酶和澱粉酶的作用下，使果汁中的果膠和澱粉分解成可溶性的小分子物質（防止果汁出現沉澱和渾濁）.酶的濃度、酶化溫度和時間因紅棗品質不同而不同，一般情況下，酶化溫度和時間分別為50-53℃和90分鍾，酶解後的果汁用泵通過二級過濾裝置輸送至超濾循環罐。
22工序：二級過濾
二級過濾裝置是安裝在酶解罐至超濾循環罐之間管道上，孔徑為1.5mm左右的過濾器，除去可能的果肉大顆粒或其他雜質，每天清洗超濾時肉眼目視檢查、清洗一次該過濾器的完整性，並做記錄。
23工序：超濾
超濾膜的孔徑為0.02um,經過超濾除去果汁中水不溶性物質和分子大於0.02um的物質（包括微生物）以及可能存在的金屬碎屑等雜質。超濾後的果汁用泵經管道輸送至清汁暫存罐。
24工序：提糖
當超濾循環液中固形物含量達到30%後，應向超濾循環液中加入軟水，將循環液中的糖份浸提至<5BX以下。浸提出果汁用泵經管道輸送至樹脂吸附工序，截留的固形物直接排放。
25工序：固形物排放
超濾提糖結束後，按下自動排渣鍵，截留的固形物從循環系統中排放。
26工序：吸附
通過樹脂吸附除去果汁中的單寧、酚類物質後，將果汁用泵輸送至四級過濾工序。
脫色樹脂要求：（1）吸附柱3套，1套吸附柱運行，一套再生，1套備用。
27工序：四級過濾
經過樹脂吸附後的果汁使用50um的金屬過濾器除去可能的樹脂顆粒或其他雜質，透過的果汁用泵經管道輸送至蒸發濃縮工序。每周大清洗時，打開過濾器肉眼目視檢查一次四級過濾器的完整性，並做記錄。
28工序：蒸發濃縮
採用降膜蒸發裝置，將果汁中的水份進行蒸發分離，冷凝水（即軟水）作為紅棗清洗用水或二榨萃取用水、超濾提糖用水，使果汁濃縮，糖度由9~18BX濃縮至70.3±0.2BRIX.
29工序：濃汁暫存
經過降溫的產品用泵輸送至批次罐中暫存，當液位達到攪拌器時開始攪拌，果汁邊進邊攪拌，罐滿後攪拌均勻，將攪拌均勻的果汁做為一個批次，用泵經管道輸送至紙板過濾系統。當果汁需要儲藏時進入降溫工序。
30工序：降溫
當濃縮汁需要儲藏時，將以上降溫至25℃左右的果汁通過熱交換器再次降溫至5-10℃左右後，用泵經管道輸送至貯存罐中。
31工序：冷藏
將進入貯存罐中的產品，在5℃以下的冷庫中冷藏。需要灌裝時將果汁用泵經管道輸送至批次罐。
32工序：第二次巴氏殺菌
將進入第二次巴氏滅菌裝置中的果汁，以殺滅細菌，大腸菌群，致病菌。（但不能殺死芽孢）,滅菌後的果汁由管道送入冷卻裝置迅速降至20℃以下，由管道送至五級過濾工序。
33工序：五級過濾
五級過濾是一個安裝在管道上的300目的金屬管道過濾器，以截留可能的雜質，透過的果汁經管道進入無菌灌裝工序。每次清洗時肉眼目視檢查一次該過濾器的完整性，並做記錄。
34工序：無菌灌裝
該工序採用FBR無菌灌裝機，濃縮果汁經管道輸送至無菌灌裝機，利用灌裝機灌裝頭腔室溫度≥95℃的滅菌條件將果汁灌入無菌袋中（外圍為保護袋和鋼桶）,灌裝重量通過質量流量計來控制。
Ⅱ 澱粉酶的提取方法
澱粉酶是蛋白質，可以根據其特點選擇適當的蛋白質提取純化方法！
選擇材料及預處理
以蛋白質和結構與功能為基礎，從分子水平上認識生命現象，已經成為現代生物學發展的主要方向，研究蛋白質，首先要得到高度純化並具有生物活性的目的物質。蛋白質的制備工作涉及物理、化學和生物等各方面知識，但基本原理不外乎兩方面。一是得用混合物中幾個組分分配率的差別，把它們分配到可用機械方法分離的兩個或幾個物相中，如鹽析，有機溶劑提取，層析和結晶等；二是將混合物置於單一物相中，通過物理力場的作用使各組分分配於來同區域而達到分離目的，如電泳，超速離心，超濾等。在所有這些方法的應用中必須注意保存生物大分子的完整性，防止酸、鹼、高溫，劇烈機械作用而導致所提物質生物活性的喪失。蛋白質的制備一般分為以下四個階段：選擇材料和預處理，細胞的破碎及細胞器的分離，提取和純化，濃細、乾燥和保存。
微生物、植物和動物都可做為制備蛋白質的原材料，所選用的材料主要依據實驗目的來確定。對於微生物，應注意它的生長期，在微生物的對數生長期，酶和核酸的含量較高，可以獲得高產量，以微生物為材料時有兩種情況：（1）得用微生物菌體分泌到培養基中的代謝產物和胞外酶等；（2）利用菌體含有的生化物質，如蛋白質、核酸和胞內酶等。植物材料必須經過去殼，脫脂並注意植物品種和生長發育狀況不同，其中所含生物大分子的量變化很大，另外與季節性關系密切。對動物組織，必須選擇有效成份含量豐富的臟器組織為原材料，先進行絞碎、脫脂等處理。另外，對預處理好的材料，若不立即進行實驗，應冷凍保存，對於易分解的生物大分子應選用新鮮材料制備。
蛋白質的分離純化
一，蛋白質（包括酶）的提取
大部分蛋白質都可溶於水、稀鹽、稀酸或鹼溶液，少數與脂類結合的蛋白質則溶於乙醇、丙酮、丁醇等有機溶劑中，因些，可採用不同溶劑提取分離和純化蛋白質及酶。
（一）水溶液提取法
稀鹽和緩沖系統的水溶液對蛋白質穩定性好、溶解度大、是提取蛋白質最常用的溶劑，通常用量是原材料體積的1-5倍，提取時需要均勻的攪拌，以利於蛋白質的溶解。提取的溫度要視有效成份性質而定。一方面，多數蛋白質的溶解度隨著溫度的升高而增大，因此，溫度高利於溶解，縮短提取時間。但另一方面，溫度升高會使蛋白質變性失活，因此，基於這一點考慮提取蛋白質和酶時一般採用低溫（5度以下）操作。為了避免蛋白質提以過程中的降解，可加入蛋白水解酶抑制劑（如二異丙基氟磷酸，碘乙酸等）。
下面著重討論提取液的pH值和鹽濃度的選擇。
1、pH值
蛋白質，酶是具有等電點的兩性電解質，提取液的pH值應選擇在偏離等電點兩側的pH 范圍內。用稀酸或稀鹼提取時，應防止過酸或過鹼而引起蛋白質可解離基團發生變化，從而導致蛋白質構象的不可逆變化，一般來說，鹼性蛋白質用偏酸性的提取液提取，而酸性蛋白質用偏鹼性的提取液。
2、鹽濃度
稀濃度可促進蛋白質的溶，稱為鹽溶作用。同時稀鹽溶液因鹽離子與蛋白質部分結合，具有保護蛋白質不易變性的優點，因此在提取液中加入少量NaCl等中性鹽，一般以0.15摩爾。升濃度為宜。緩沖液常採用0.02-0.05M磷酸鹽和碳酸鹽等滲鹽溶液。
（二）有機溶劑提取法
一些和脂質結合比較牢固或分子中非極性側鏈較多的蛋白質和酶，不溶於水、稀鹽溶液、稀酸或稀鹼中，可用乙醇、丙酮和丁醇等有機溶劑，它們具的一定的親水性，還有較強的親脂性、是理想的提脂蛋白的提取液。但必須在低溫下操作。丁醇提取法對提取一些與脂質結合緊密的蛋白質和酶特別優越，一是因為丁醇親脂性強，特別是溶解磷脂的能力強；二是丁醇兼具親水性，在溶解度范圍內（度為10%，40度為6.6%）不會引起酶的變性失活。另外，丁醇提取法的pH及溫度選擇范圍較廣，也適用於動植物及微生物材料。
二、蛋白質的分離純化
蛋白質的分離純化方法很多，主要有：
（一）根據蛋白質溶解度不同的分離方法
1、蛋白質的鹽析
中性鹽對蛋白質的溶解度有顯著影響，一般在低鹽濃度下隨著鹽濃度升高，蛋白質的溶解度增加，此稱鹽溶；當鹽濃度繼續升高時，蛋白質的溶解度不同程度下降並先後析出，這種現象稱鹽析，將大量鹽加到蛋白質溶液中，高濃度的鹽離子（如硫酸銨的SO4和NH4)有很強的水化力，可奪取蛋白質分子的水化層，使之「失水」，於是蛋白質膠粒凝結並沉澱析出。鹽析時若溶液pH在蛋白質等電點則效果更好。由於各種蛋白質分子顆粒大小、親水程度不同，故鹽析所需的鹽濃度也不一樣，因此調節混合蛋白質溶液中的中性鹽濃度可使各種蛋白質分段沉澱。
影響鹽析的因素有：（1）溫度：除對溫度敏感的蛋白質在低溫（4度）操作外，一般可在室溫中進行。一般溫度低蛋白質溶介度降低。但有的蛋白質（如血紅蛋白、肌紅蛋白、清蛋白）在較高的溫度（25度）比0度時溶解度低，更容易鹽析。（2）pH值：大多數蛋白質在等電點時在濃鹽溶液中的溶介度最低。（3）蛋白質濃度：蛋白質濃度高時，欲分離的蛋白質常常夾雜著其他蛋白質地一起沉澱出來（共沉現象）。因此在鹽析前血清要加等量生理鹽水稀釋，使蛋白質含量在2.5-3.0%。
蛋白質鹽析常用的中性鹽，主要有硫酸銨、硫酸鎂、硫酸鈉、氯化鈉、磷酸鈉等。 其中應用最多的硫酸銨，它的優點是溫度系數小而溶解度大（25度時飽和溶液為4.1M，即767克/升；0度時飽和溶解度為3.9M，即676克/升），在這一溶解度范圍內，許多蛋白質和酶都可以鹽析出來；另外硫酸銨分段鹽析效果也比其他鹽好，不易引起蛋白質變性。硫酸銨溶液的pH常在4.5-5.5之間，當用其他pH值進行鹽析時，需用硫酸或氨水調節。
蛋白質在用鹽析沉澱分離後，需要將蛋白質中的鹽除去，常用的辦法是透析，即把蛋白質溶液裝入秀析袋內（常用的是玻璃紙），用緩沖液進行透析，並不斷的更換緩沖液，因透析所需時間較長，所以最好在低溫中進行。此外也可用葡萄糖凝膠G-25或G-50過柱的辦法除鹽，所用的時間就比較短。
2、等電點沉澱法
蛋白質在靜電狀態時顆粒之間的靜電斥力最小，因而溶解度也最小，各種蛋白質的等電點有差別，可利用調節溶液的pH達到某一蛋白質的等電點使之沉澱，但此法很少單獨使用，可與鹽析法結合用。
3、低溫有機溶劑沉澱法
用與水可混溶的有機溶劑，甲醇，乙醇或丙酮，可使多數蛋白質溶解度降低並析出，此法分辨力比鹽析高，但蛋白質較易變性，應在低溫下進行。
（二）根據蛋白質分子大小的差別的分離方法
1、透析與超濾
透析法是利用半透膜將分子大小不同的蛋白質分開。
超濾法是利用高壓力或離心力，強使水和其他小的溶質分子通過半透膜，而蛋白質留在膜上，可選擇不同孔徑的瀘膜截留不同分子量的蛋白質。
2、凝膠過濾法
也稱分子排阻層析或分子篩層析，這是根據分子大小分離蛋白質混合物最有效的方法之一。柱中最常用的填充材料是葡萄糖凝膠（Sephadex ged）和瓊脂糖凝膠（agarose gel）。
（三）根據蛋白質帶電性質進行分離
蛋白質在不同pH環境中帶電性質和電荷數量不同，可將其分開。
1、電泳法
各種蛋白質在同一pH條件下，因分子量和電荷數量不同而在電場中的遷移率不同而得以分開。值得重視的是等電聚焦電泳，這是利用一種兩性電解質作為載體，電泳時兩性電解質形成一個由正極到負極逐漸增加的pH梯度，當帶一定電荷的蛋白質在其中泳動時，到達各自等電點的pH位置就停止，此法可用於分析和制備各種蛋白質。
2、離子交換層析法
離子交換劑有陽離子交換劑（如：羧甲基纖維素；CM-纖維素）和陰離子交換劑（二乙氨基乙基纖維素；DEAE?FONT FACE="宋體" LANG="ZH-CN">纖維素），當被分離的蛋白質溶液流經離子交換層析柱時，帶有與離子交換劑相反電荷的蛋白質被吸附在離子交換劑上，隨後用改變pH或離子強度辦法將吸附的蛋白質洗脫下來。（詳見層析技術章）
（四）根據配體特異性的分離方法－親和色譜法
親和層析法（aflinity chromatography）是分離蛋白質的一種極為有效的方法，它經常只需經過一步處理即可使某種待提純的蛋白質從很復雜的蛋白質混合物中分離出來，而且純度很高。這種方法是根據某些蛋白質與另一種稱為配體(Ligand）的分子能特異而非共價地結合。其基本原理：蛋白質在組織或細胞中是以復雜的混合物形式存在，每種類型的細胞都含有上千種不同的蛋白質，因此蛋白質的分離（Separation），提純（Purification）
和鑒定（Characterization）是生物化學中的重要的一部分，至今還沒的單獨或一套現成的方法能移把任何一種蛋白質從復雜的混合蛋白質中提取出來，因此往往採取幾種方法聯合使用。
細胞的破碎
1、高速組織搗碎：將材料配成稀糊狀液，放置於筒內約1/3體積，蓋緊筒蓋，將調速器先撥至最慢處，開動開關後，逐步加速至所需速度。此法適用於動物內臟組織、植物肉質種子等。
2、玻璃勻漿器勻漿：先將剪碎的組織置於管中，再套入研桿來回研磨，上下移動，即可將細胞研碎，此法細胞破碎程度比高速組織搗碎機為高，適用於量少和動物臟器組織。
3、超聲波處理法：用一定功率的超聲波處理細胞懸液，使細胞急劇震盪破裂，此法多適用於微生物材料，用大腸桿菌制備各種酶，常選用50-100毫克菌體/毫升濃度，在1KG至10KG頻率下處理10-15分鍾，此法的缺點是在處理過程會產生大量的熱，應採取相應降溫措施。對超聲波敏感和核酸應慎用。
4、反復凍融法：將細胞在-20度以下冰凍，室溫融解，反復幾次，由於細胞內冰粒形成和剩餘細胞液的鹽濃度增高引起溶脹，使細胞結構破碎。
5、化學處理法：有些動物細胞，例如腫瘤細胞可採用十二烷基磺酸鈉（SDS）、去氧膽酸鈉等細胞膜破壞，細菌細胞壁較厚，可採用溶菌酶處理效果更好。
無論用哪一種方法破碎組織細胞，都會使細胞內蛋白質或核酸水解酶釋放到溶液中，使大分子生物降解，導致天然物質量的減少，加入二異丙基氟磷酸（DFP）可以抑制或減慢自溶作用；加入碘乙酸可以抑制那些活性中心需要有疏基的蛋白水解酶的活性，加入苯甲磺醯氟化物（PMSF）也能清除蛋白水解酥活力，但不是全部，還可通過選擇pH、溫度或離子強度等，使這些條件都要適合於目的物質的提取。
濃縮、乾燥及保存
一、樣品的濃縮
生物大分子在制備過程中由於過柱純化而樣品變得很稀，為了保存和鑒定的目的，往往需要進行濃縮。常用的濃縮方法的：
1、減壓加溫蒸發濃縮
通過降低液面壓力使液體沸點降低，減壓的真空度愈高，液體沸點降得愈低，蒸發愈快，此法適用於一些不耐熱的生物大分子的濃縮。
2、空氣流動蒸發濃縮 空氣的流動可使液體加速蒸發,鋪成薄層的溶液，表面不斷通過空氣流；或將生物大分子溶液裝入透析袋內置於冷室，用電扇對准吹風，使透過膜外的溶劑不沁蒸發，而達到濃縮目的，此法濃縮速度慢，不適於大量溶液的濃縮。
3、冰凍法 生物大分子在低溫結成冰，鹽類及生物大分子不進入冰內而留在液相中，操作時先將待濃縮的溶液冷卻使之變成固體，然後緩慢地融解，利用溶劑與溶質融點介點的差別而達到除去大部分溶劑的目的。如蛋白質和酶的鹽溶液用此法濃縮時，不含蛋白質和酶的純冰結晶浮於液面，蛋白質和酶則集中於下層溶液中，移去上層冰塊，可得蛋白質和酶的濃縮液。
4、吸收法 通過吸收劑直接收除去溶液中溶液分子使之濃縮。所用的吸收劑必需與溶液不起化學反應，對生物大分子不吸附，易與溶液分開。常用的吸收劑有聚乙二醇，聚乙稀吡咯酮、蔗糖和凝膠等，使用聚乙二醇吸收劑時，先將生物大分子溶液裝入半透膜的袋裡，外加聚乙二醇復蓋置於4度下，袋內溶劑滲出即被聚乙二醇迅速吸去，聚乙二醇被水飽和後要更換新的直至達到所需要的體積。
5、超濾法 超濾法是使用一種特別的薄膜對溶液中各種溶質分子進行選擇性過濾的方法，不液體在一定壓力下（氮氣壓或真空泵壓）通過膜時，溶劑和小分子透過，大分子受阻保留，這是近年來發展起來的新方法，最適於生物大分子尤其是蛋白質和酶的濃縮或脫鹽，並具有成本低，操作方便，條件溫和，能較好地保持生物大分子的活性，回收率高等優點。應用超濾法關鍵在於膜的選擇，不同類型和規格的膜，水的流速，分子量截止值（即大體上能被膜保留分子最小分子量值）等參數均不同，必須根據工作需要來選用。另外，超濾裝置形式，溶質成份及性質、溶液濃度等都對超濾效果的一定影響。Diaflo 超濾膜的分子量截留值：
膜名稱
分子量截留值
孔的大的平均直徑
XM－300
300，000
140
XM－200
100，000
55
XM－50
50，000
30
PM－30
30，000
22
UM－20
20，000
18
PM－10
10，000
15
UM－2
1，000
12
UM05
500
10
用上面的超濾膜製成空心的纖維管，將很多根這樣的管攏成一束，管的兩端與低離子強度的緩沖液相連，使緩沖液不斷地在管中流動。然後將纖維管浸入待透析的蛋白質溶液中。當緩沖液流過纖維管時，則小分子很易透過膜而擴散，大分子則不能。這就是纖維過濾秀析法，由於透析面積增大，因而使透析時間縮短10倍。
二、乾燥
生物大分子制備得到產品，為防止變質，易於保存，常需要乾燥處理，最常用的方法是冷凍乾燥和真空乾燥。真空乾燥適用於不耐高溫，易於氧化物質的乾燥和保存，整個裝置包括乾燥器、冷凝器及真空乾燥原理外，同時增加了溫度因素。在相同壓力下，水蒸汽壓隨溫度下降而下降，故在低溫低壓下，冰很易升華為氣體。操作時一般先將待乾燥的液體冷凍到冰點以下使之變成固體，然後在低溫低壓下將溶劑變成氣體而除去。此法干後的產品具有疏鬆、溶解度好、保持天然結構等優點，適用於各類生物大分子的乾燥保存。
三、貯存
生物大分子的穩定性與保存方法的很大關系。乾燥的製品一般比較穩定，在低溫情況下其活性可在數日甚至數年無明顯變化，貯藏要求簡單，只要將乾燥的樣品置於乾燥器內（內裝有乾燥劑）密封，保持0－4度冰箱即可，液態貯藏時應注意以下幾點。
1、樣品不能太稀，必須濃縮到一定濃度才能封裝貯藏，樣品太稀易使生物大分子變性。
2、一般需加入防腐劑和穩定劑，常用的防腐劑有甲苯、苯甲酸、氯仿、百里酚等。蛋白質和酶常用的穩定劑有硫酸銨糊、蔗糖、甘油等，如酶也可加入底物和輔酶以提高其穩定性。此外，鈣、鋅、硼酸等溶液對某些酶也有一定保護作用。核酸大分子一般保存在氯化鈉或檸檬酸鈉的標准緩沖液中。
3、貯藏溫度要求低，大多數在0度左右冰箱保存，有的則要求更低，應視不同物質而定。