失活酶液與蒸餾水的差別

『壹』 蒸餾水與DI水有什麼差別

區別：

1、定義

蒸餾水：是指經過蒸餾、冷凝操作的水，蒸二次的叫重蒸水，三次的叫三蒸水 。

DI水：是指除去了呈離子形式雜質後的純水。

2、製作方式

蒸餾水：自然界中的水都不純凈 ，通常含有鈣、鎂、鐵等多種鹽，還含有機物、微生物、溶解的氣體（如二氧化碳）和懸浮物等。用蒸餾方法可以除去其中的不揮發組成。用蒸餾法，並配合以下一些措施，可以獲取質量較高的蒸餾水

1、排去初始餾分（約占原水的20%），因為揮發組分主要集中在初始餾分中。

2、排去殘留部分（約占原水的20%），因為很多不揮發組分集中在殘留水中。

3、添加某些物質以利於蒸餾。例如，添加NaOH，使水中的CO2變成難揮發組分，添加KMnO4可氧化水中的有機物。

DI水：從自來水到去離子水一般要經過幾步處理 ：先通過石英砂過濾顆粒較粗的雜質。然後高壓通過反滲透膜。最後一般還要經過紫外殺菌以去除水中的微生物。

蒸餾水：

(1)失活酶液與蒸餾水的差別擴展閱讀：

蒸餾水的用途：

1、在生活中，一般和機器、電器相關的時候，蒸餾水的作用主要是它不導電，保證機器運行穩定，延長電器使用壽命。

2、在醫葯行業 ，蒸餾水的作用是因為低滲作用。用蒸餾水沖洗手術傷口，使創面可能殘留的腫瘤細胞吸水膨脹，破裂，壞死，失去活性，避免腫瘤在創面種植生長。

3、學校里的化學實驗，有些需要用蒸餾水，利用的就是蒸餾水無電解質，沒有游離離子，或是沒有雜質。你需要具體問題具體分析，看看是利用它不導電的性質，還是低滲作用，還是沒有其他離子，不會發生化學反應的作用。

DI水的用途：

1、實驗室、化驗室用水，一般實驗室的常規試驗、配置常備溶液、清洗玻璃器皿等；

2、電子工業生產，如顯像管玻殼、顯像管、液晶顯示器、線路板、計算機硬碟、集成電路晶元、單晶硅半導體等；

3、電力鍋爐，鍋爐所需軟化水、除鹽；

4、汽車、家用電器、建材表面塗裝、電鍍、鍍膜玻璃清洗等；

5、石油化工行業,化工反應冷卻水、化學葯劑、生產配液用水等；

6、工業紡織印染、鋼鐵清洗用水等；

7、食品、飲料、酒類、化妝品生產用水；

8、海水、苦鹹水等凈化。

參考資料來源：網路-去離子水

參考資料來源：網路-蒸餾水

『貳』 澱粉酶溶液與蒸餾水,反應的實驗現象是什麼

證明唾液澱粉酶的成分是蛋白質
1．實驗原理
唾液澱粉酶中含有蛋白質,與硝酸反應生成黃色.
2．實驗步驟
（1）制備唾液澱粉酶溶液：用冷開水嗽口,然後把小團消毒過的衛生棉放入口腔中含3分鍾,把棉團取出,用手指把唾液擠壓到小燒杯中,加蒸餾水100mL,稀釋均勻,製成唾液澱粉酶溶液,備用.
（2）雞蛋一個,兩端各打一個小孔,把蛋白倒入小燒杯內,加蒸餾水300mL,稀釋均勻,製成蛋白溶液,備用.
（3）用三支試管,編上A、B、C號.分別倒入：A管,蒸餾水5mL；B管,蛋白溶液5mL；C管,唾液澱粉酶溶液5mL.
（4）往三隻試管中各滴入濃硝酸5滴,觀察現象.
3．實驗現象
A（蒸餾水5mL）
B（蛋白溶液5mL）
C（澱粉酶溶液5mL）
顏色變化
無變化
黃色沉澱
黃色沉澱
4．實驗結論
唾液澱粉酶中含有蛋白質

『叄』 蒸餾水對酶活性的影響顏色

酶的顏色發古銅色,蒸餾水無色,加一起,顏色變淺。
影響酶活性的條件一、實驗目的：1、初步學會探索影響酶活性條件的方法.2、探索過氧化氫酶在不同溫度和PH下催化過氧化氫水解的情況.二、實驗原理：澱粉遇碘後,形成紫藍色的復合物.麥芽糖和葡萄糖遇碘後,不形成紫藍色的復合物,但能與斐林試劑發生氧化還原反應,生成磚紅色的氧化亞銅沉澱.三、實驗材料：質量分數為2%的新配置的澱粉酶溶液,新鮮的質量分數為20%的豬肝研磨液,質量分數為3%的可溶性澱粉溶液,新配製的體積分數為3%的過氧化氫溶液,質量分數為5%的鹽酸,質量分數為5%的氫氧化鈉溶液,蒸餾水,冰水,熱水,碘液,斐林試劑四、實驗用具：量筒,試管,滴管,試管夾,三腳架,火柴,酒精燈,小燒杯,大燒杯,石棉網,溫度計,五、方法步驟：一、溫度對酶活性的影響1、取三支潔凈的試管,編上號1,2,3,並分別注入2ml可溶性澱粉液.2、分別向1,2,3號三支試管中各注入1ml新鮮的澱粉酶溶液,搖勻,依次放入沸水,37℃左右的熱水,冰水中,維持各自的溫度5分鍾.3、分別向1,2,3號三支試管中各滴入一滴碘液,然後搖勻.觀察並記錄這三隻試管中,溶液顏色的變化情況.二、pH對酶活性的影響1、取三支潔凈的試管,編上號1,2,3,並分別注入1ml的新鮮的澱粉酶溶液.2、依次向1號,2號,3號試管中注入蒸餾水,氫氧化鈉溶液,稀鹽酸各1ml並搖勻.3、分別向1號,2號,3號試管中各注入2ml可溶性澱粉溶液,震盪搖勻.4、將三支試管的下半部浸到37℃左右的溫水中,保溫5分鍾.5、向三支試管中各加入2ml斐林試劑,震盪搖勻.

『肆』 測定過氧化氫酶活力的方法有哪些，原理各是什麼

過氧化氫酶的活性測定——紫外吸收法
【原理】
H2O2在240nm波長下有強烈吸收,過氧化氫酶能分解過氧化氫,使反應溶液吸光度(A240)隨反應時間而降低.根據測量吸光率的變化速度即可測出過氧化氫酶的活性.
【儀器與用具】
紫外分光光度計；離心機；研缽；250ml容量瓶1個；0.5ml刻度吸管2支,2ml刻度吸管1支；10ml試管3支；恆溫水浴；
【試劑】
0.2mol/L
pH7.8磷酸緩沖液（內含1%聚乙烯吡咯烷酮）；
0.1mol/L
H2O2（用0.1mol/L高錳酸鉀標定）.
【方法】
1.酶液提取：稱取新鮮小麥葉片或其它植物組織0.5g置研缽中,加入2～3ml
4℃下預冷的pH7.0磷酸緩沖液和少量石英砂研磨成勻漿後,轉入25ml容量瓶中,並用緩沖液沖洗研缽數次,合並沖洗液,並定容到刻度.混合均勻將量瓶置5℃冰箱中靜置10min,取上部澄清液在4000rpm下離心15min,上清液即為過氧化氫酶粗提液.5℃下保存備用.
2.測定：取10ml試管3支,其中2支為樣品測定管,1支為空白管,按表40-2順序加入試劑.
表40-2
紫外吸收法測定H2O2樣品液配置表
管
號
S1
S2
S3
粗酶液(ml)
0.2
0.2
0.2
pH7.8磷酸(ml)
1.5
1.5
1.5
蒸餾水(ml)
1.0
1.0
1.0
25℃預熱後,逐管加入0.3ml
0.1mol/L的H2O2,每加完一管立即記時,並迅速倒入石英比色杯中,240nm下測定吸光度,每隔1min讀數1次,共測4min,待3支管全部測定完後,按下式計算酶活性.
3.結果計算：
以1min內A240減少0.1的酶量為1個酶活單位（u）.
過氧化氫酶活性(u/gFW/min)=
式中
A240
=
AS0－
AS0—加入煮死酶液的對照管吸光值；
AS1,
AS2—樣品管吸光值；
Vt—粗酶提取液總體積（ml）；
V1—測定用粗酶液體積（ml）；
FW—樣品鮮重（g）；
0.1—A240每下降0.1為1個酶活單位（u）；
t—加過氧化氫到最後一次讀數時間（min）.

『伍』 高一生物驗證酶的催化性試驗為什麼要加入蒸餾水

讓我復來為你釋惑：制

當你在做一個生物學實驗時，為了得到一個可以讓人信服的實驗結果，你就必須要注意你的實驗的嚴謹性，而為了說明一樣事物的本質，在生物學的試驗中，對照試驗就是一個很好的說服力。

現在話題回到你的問題:高一生物驗證酶的催化性試驗為什麼要加入蒸餾水？

在你做的驗證酶的催化性實驗中，當你將酶液與底物放到一塊進行反應，得到了反應產物，並且反應還比沒加酶液的時候要快要更加容易的發生。
但是這還不能說明是酶催化了底物反應生成產物，不懂的人可能會認為是與酶一起的蒸餾水起到了催化作用。
所以你為了能讓那些人明白不是蒸餾水的作用，所以你就要再做一組對照試驗：在另一個試管中加入蒸餾水與底物，接著什麼事情都沒有發生
所以你就可以向那些無知的人大聲宣布：真正起作用的是酶，而不是蒸餾水。最後你用實驗證明了酶具有催化能力。

以上是我的所有回答

『陸』 果膠酶的檢測方法

果膠酶活性的檢測

[目的]
本檢測方法是用來果膠酶的催化活性。本方法適用於各種固體和液體果膠酶制劑。
[說明]
本方法適合於果膠酶的質量分析和質量控制領域。但不是本公司產品及其它公司產品的絕對活力的預測，而各種酶制劑的最終的酶活力在良好的實驗操作下仍可發揮出更好的催化活力。
[原理]
果膠物質主要存在於植物初生壁和細胞中間，果膠物質是細胞壁的基質多糖。果膠包括兩種酸性多糖（聚半乳糖醛酸、聚鼠李半乳糖醛酸）和三種中性多糖（阿拉伯聚糖、半乳聚糖、阿拉伯半乳聚糖）。果膠酶本質上是聚半乳糖醛酸水解酶，果膠酶水解果膠主要生成β-半乳糖醛酸,可用次碘酸鈉法進行半乳醛酸的定量,從而測定果膠酶活力。
[果膠酶活力單位定義]
1g(或1ml液體酶)酶粉,於50.0℃、pH3.5條件下,每分鍾催化果膠水解生成1微克半乳糖醛酸的酶量為一個活力單位。
1. 試劑和儀器
*本標准所使用所有的試劑若無任何說明，均為分析純
1.1 醋酸
1.2 碘
1.3 碘花鉀
1.4 濃硫酸
1.5 果膠（sigma公司）
1.6 硫代硫酸鈉
1.7 碳酸鈉
1.8 可溶性澱粉
1.9 水浴鍋
1.10 碘量瓶
2. 試劑的制備
2.1 pH3.5的酸水
用醋酸將蒸餾水調至3.5
2.2 1%果膠溶液：
准確稱取分析純果膠1g，用酸水溶解煮沸，冷卻後過濾，定至100ml。
2.2 0.1N碘液：
准確稱取碘化鉀5g，用蒸餾水溶解後，加入2.54g碘，溶解後定容至100ml。
2.3 0.025mol/L硫代硫酸鈉：
准確稱取6.2g硫代硫酸鈉，加蒸餾水後定容至1L
2.4 0.5%可溶性澱粉指示劑：
准確稱取可溶性澱粉0.5g放入沸水中消煮至透明。
2.5 1M碳酸鈉溶液：
准確稱取10.6g碳酸鈉，定容於100ml的水中
2.6 2N硫酸：
吸10ml的濃硫酸倒入170ml的水中
2.7 酶樣的制備
准確稱取1.000g固體酶或移取1ml液體酶樣，定容至100ml，於50℃水浴浸取1小時，過濾，濾液為供試酶液。則該酶已經稀釋100倍。
3. 程序
3.1 取1%果膠酶10ml加入5ml酶液和5ml蒸餾水（PH3.5），在50℃水浴中保溫反應1小時。
3.2 取出後加熱煮沸2~3min，冷卻後，補水至20ml。
3.3 取5ml反應液於100ml碘量瓶中，加1M碳酸鈉溶液1ml，0.1N碘液5ml，搖勻，具塞，於室溫暗處下放置20min。
3.4 取出後加2N硫酸2ml，立即用0.05N硫代硫酸鈉溶液滴定至淺黃色，加1ml0.5%可溶性澱粉溶液，繼續滴定至藍色消失為止。
3.5 空白試驗以煮沸失活的酶液或蒸餾水代替酶液進行滴定。
3.6 每個酶樣最少做兩個平行樣。
4. 計算
4.1 將測得的各平行樣求OD值的均值。
4.2 計算酶的活性單位依據以下公式

酶的活力= [(B-A)*N*0.5*175*20*n*1000]/[51*52*W*60 ]
單位： U/g(ml)

式中： A：樣品滴定所消耗硫代硫酸鈉的毫升數。
B：空白滴定所消耗硫代硫酸鈉的毫升數。
N：硫代硫酸鈉摩爾濃度。
0.5：1當量硫代硫酸鈉相當於0.5當量半乳糖醛酸。
20：反應液總體積
51：酶液體積以1ml計
52：吸取反應液
n：稀釋倍數
W：酶粉重量g或酶液體積ml

『柒』 就是那個用透析法純化蛋白酶用蒸餾水為什麼不對啊

你如果是高中生，並且這屬於生物題，那就是如下解釋：1，用緩沖液更能保證蛋白質的內活性，用蒸餾水容雖說沒有嚴重錯誤但對蛋白質活性的保持還是有風險的，若實驗中不小心濺進去酸或鹼，顯然緩沖液更保險。
如果是更詳細的解釋，則除了上面，還有2，合適的緩沖液可以抑制蛋白質水解，保持將ph控制在等電點附近，防止蛋白質聚沉。3，蛋白質多親水，緩沖液中離子可以防止過多水分子水合蛋白質。
至於別的緩沖液，最好還是用磷酸，原因：1，磷酸三元且弱酸，緩沖餘地更大，而且磷元素比較親生物。2，碳酸鈉，碳酸氫鈉易分解，亞硫酸根又時不時會產生有毒物質，硫代硫酸根又活潑，氫氟酸，次氯酸更不用說，常見的只有磷酸緩沖液最佳。

『捌』 果膠酶怎麼樣定性檢測什麼方法能像剛果紅染色檢測纖維素酶一樣可以出現透明圈

[原理]
果膠物質主要存在於植物初生壁和細胞中間，果膠物質是細胞壁的基質多糖。果膠包括兩種酸性多糖（聚半乳糖醛酸、聚鼠李半乳糖醛酸）和三種中性多糖（阿拉伯聚糖、半乳聚糖、阿拉伯半乳聚糖）。果膠酶本質上是聚半乳糖醛酸水解酶，果膠酶水解果膠主要生成β-半乳糖醛酸,可用次碘酸鈉法進行半乳醛酸的定量,從而測定果膠酶活力。
果膠酶活力單位定義]
1g(或1ml液體酶)酶粉,於50.0℃、pH3.5條件下,每分鍾催化果膠水解生成1微克半乳糖醛酸的酶量為一個活力單位。
1. 試劑和儀器
*本標准所使用所有的試劑若無任何說明，均為分析純
1.1 醋酸
1.2 碘
1.3 碘花鉀
1.4 濃硫酸
1.5 果膠（sigma公司）
1.6 硫代硫酸鈉
1.7 碳酸鈉
1.8 可溶性澱粉
1.9 水浴鍋
1.10 碘量瓶
2. 試劑的制備
2.1 pH3.5的酸水
用醋酸將蒸餾水調至3.5
2.2 1%果膠溶液：
准確稱取分析純果膠1g，用酸水溶解煮沸，冷卻後過濾，定至100ml。
2.2 0.1N碘液：
准確稱取碘化鉀5g，用蒸餾水溶解後，加入2.54g碘，溶解後定容至100ml。
2.3 0.025mol/L硫代硫酸鈉：
准確稱取6.2g硫代硫酸鈉，加蒸餾水後定容至1L
2.4 0.5%可溶性澱粉指示劑：
准確稱取可溶性澱粉0.5g放入沸水中消煮至透明。
2.5 1M碳酸鈉溶液：
准確稱取10.6g碳酸鈉，定容於100ml的水中
2.6 2N硫酸：
吸10ml的濃硫酸倒入170ml的水中
2.7 酶樣的制備
准確稱取1.000g固體酶或移取1ml液體酶樣，定容至100ml，於50℃水浴浸取1小時，過濾，濾液為供試酶液。則該酶已經稀釋100倍。
3. 程序
3.1 取1%果膠酶10ml加入5ml酶液和5ml蒸餾水（PH3.5），在50℃水浴中保溫反應1小時。
3.2 取出後加熱煮沸2~3min，冷卻後，補水至20ml。
3.3 取5ml反應液於100ml碘量瓶中，加1M碳酸鈉溶液1ml，0.1N碘液5ml，搖勻，具塞，於室溫暗處下放置20min。
3.4 取出後加2N硫酸2ml，立即用0.05N硫代硫酸鈉溶液滴定至淺黃色，加1ml0.5%可溶性澱粉溶液，繼續滴定至藍色消失為止。
3.5 空白試驗以煮沸失活的酶液或蒸餾水代替酶液進行滴定。
3.6 每個酶樣最少做兩個平行樣。
4. 計算
4.1 將測得的各平行樣求OD值的均值。
4.2 計算酶的活性單位依據以下公式

酶的活力= [(B-A)*N*0.5*175*20*n*1000]/[51*52*W*60 ]
單位： U/g(ml)

式中： A：樣品滴定所消耗硫代硫酸鈉的毫升數。
B：空白滴定所消耗硫代硫酸鈉的毫升數。
N：硫代硫酸鈉摩爾濃度。
0.5：1當量硫代硫酸鈉相當於0.5當量半乳糖醛酸。
20：反應液總體積
51：酶液體積以1ml計
52：吸取反應液
n：稀釋倍數
W：酶粉重量g或酶液體積ml

『玖』 果膠酶液能用蒸餾水稀釋嗎

可以。在稀釋果膠酶液時，使用純凈水、冷水、蒸餾水這三種水都可以。果膠酶是一種優良的麴黴菌株，經液體深層發酵和現代生物後提取技術而制備的高活力果膠酶制劑。

『拾』 為什麼配製的酶試劑或稀釋酶標本不用蒸餾水或生理鹽水而用緩沖液

你好！
酶有最適PH，而且一般的酶都是蛋白質，可以說一種很復雜的弱酸弱鹼，稀釋導致的PH改變，可能使活性下降
打字不易，採納哦！