50tae蒸餾水

Ⅰ 如何用微量移液器量取50微升的蒸餾水

實驗步驟 1、輕輕轉動微量移液器的調節輪，使讀數顯示為所要取液體的體積。 2、把白套筒頂端插入吸頭，在輕輕用力下壓的同時，把手中的移液器按逆時針方向旋轉一下。 （切記力不能過猛，更不能採取剁吸頭的方法來進行安裝，因為那樣做會對您手中的移液器 造成不必要的損傷。 P1000 使用藍色微量移液器頭， P200 及 P20 使用黃色微量移液器頭。 ） 3、輕輕按下推動按鈕，推到第一檔。 4、手握移液器，將吸液尖垂直浸入蒸餾水中，浸入深度為 2~4mm。 5、經 2~3s 後緩慢松開推動按鈕，即從第一擋還原。 第一次我們用量程為 P1000 的微量吸移器分別量取 1000?L,500?L., 200?L 蒸餾水， 每組 量取三次。 第二次我們用 P20 分別量取 20?L, 10?L, 5?L 蒸餾水,每組量取三次。 第三次我們用P200 的微量吸移器分別量取 200?L, 100?L, 50? 蒸餾水，每組量取三次。 6、將微量移液器垂直放在天枰上，按動推動按鈕到第一擋，液體泄出，再繼續按動推動按鈕到 第二擋，使吸液尖末端殘留液體完全泄出，放鬆按鈕，使推動按鈕復原。 7、觀察電子天枰，並記錄數值。 分別為： 量程為 P1000 的微量吸液器的 1000?L, 500?L., 200?L.蒸餾水。 量程為 P20 的微量吸液器的 20?L, 10?L, 5?L 蒸餾水。 量程為 P200 的微量吸液器的 200?L, 100?L, 50?L 蒸餾水。 8，每次用天枰讀取數值後要清零。 9，每次完成測取數值後，要把防水膜中的取出，放到收容器中。 10，按下吸液管活塞下側的按鈕，將尖端管退到垃圾桶中。 五、實驗結果 * 在 25 攝氏度下，一毫升液態水的重量為一克。體積=質量/密度 由於在本次實驗中，所 稱量的液體（蒸餾水）的密度為 1。所以體積=質量。我們就可以通過電子天枰，測出所求液 體的質量， 求出液體的體積。 並通過測出的質量和微量移液器取出的體積， 可以 算出誤差值。 * 橫軸：微量移液器的種類以及實驗的次數、所稱取的數值 * 縱軸：所稱蒸餾水的量 實驗 1 1000p 1000?L. 500?L. 200?L. 誤差率：<=0.8 1 0.9900g 0.4900g 0.2100g 2 1.0000g 0.5000g 0.2000g 3 0.9900g 0.5000g 0.2100g 平均 0.9933g 0.4967g 0.2067g 誤差值 -0.667% -0.660% 3.350% 實驗 2 20p 20?L. 10?L. 5?L. 誤差率：<=1 1 0.0180g 0.0100g 0.0050g 2 0.0200g 0.0090g 0.0050g 3 0.0190g 0.0100g 0.0050g 平均 0.0190g 0.0097g 0.0050g 誤差值 -5.00% -3.00% 0% 實驗三 200p 200?L. 100?L. 50?L. 誤差率：<=0.8 1 0.2100g 0.1100g 0.0500g 2 0.2000g 0.1100g 0.0500g 3 0.2100g 0.0900g 0.0500g 平均 0.2067g 0.1033g 0.0500g 誤差值 3.350% 3.300% 0% 實驗誤差： 誤差值=【（平均體積-理想體積）/理想體積】X100 P1000： （0.9933-1.000）/1.000*100%=-0.667% (0.4967-0.5）/0.5*100%=-0.660% ( 0.2067-0.2）/0.2*100%=3.350% P200： (0.2067-0.20）/0.2*100%=3.350% (0.1033-0.10）/0.1*100%=3.300% (0.0500-0.05）/0.05*100%=0% P20： (0.0190-0.02）/0.02*100%=-5.00% (0.0097-0.01）/0.01*100%=-3.00% (0.005-0.005)/0.005*100%=0%

Ⅱ TAE緩沖液哪有賣

TAE緩沖液 是生物學中使用最廣泛的核酸電泳緩沖液，主要用於DNA 的瓊脂糖凝膠電泳。TAE緩沖液的主要成分是Tris-乙酸鹽與EDTA，電泳時雙鏈線狀DNA 的遷移率較快，電泳大於13kb 的片段時分離效果好，此外，回收DNA 片段時也宜用TAE 緩沖系統進行電泳。
索萊寶的是50×TAE 緩沖液，工作濃度為1×，可直接用蒸餾水稀釋50 倍後使用。若產品出現沉澱析出，請置於37℃水浴使其溶解，不影響使用。

Ⅲ DNA指紋圖譜的產生的方法

2.1 主要試劑及器材
產生 DNA 指紋圖譜的主要試劑及器材如下：限制性內切酶 HinfⅠ、HaeⅢ等；電泳級瓊
脂糖；尼龍膜；λDNA/EcoRⅠ+HindⅢ；H4 型（24×20cm）水平電泳槽裝置；Model 250 型
電泳儀；標記試劑盒 Prime-a-Gene&reg; Labeling system；（α-32P）dCTP；X 光膠片；LS5801
型液閃儀；FYY-1 型多功能生化反應儀。
2.2 有關試劑的配製
（1） ACD 抗凝劑
檸檬酸 0.48g
檸檬酸鈉 1.32g
葡萄糖 1.47g
加水至 100ml
（2） T10E10 緩沖液
Tris-HCl 10mmol/dm3
EDTA 10mmol/dm3
pH 值：8.0
（3）TE 緩沖液
Tris-HCl 10mmol/dm3
EDTA 1mmol/dm3
pH 值：8.0
（4）20%SDS（100ml）
SDS 20g
溶於 100ml 蒸餾水中，30℃以上貯存。
（5）USSTE 裂解液
Urea 8mmol/dm3
NaCl 0.3mol/dm3
SDS 2%
Tris-HCl 150mmol/dm3
EDTA 1mmol/dm3
pH 值：7.5
（6）Tris 飽和酚
新蒸苯酚加入 8-羥基喹啉至終濃度為 0.1%，用 1mol/dm3 Tris-HCl 和0.5mol/dm3
Tris-HCl 溶液飽和至 pH 值 8.0，去掉上層水相，加適量（約 1/10 體積）的 0.1mol/dm3 Tris-HCl
（pH 值8.0）覆蓋在酚相上，保持4℃，放在棕色瓶中保存。
（7）50×TAE 緩沖液（1 000ml）
Tris 242g
冰醋酸 57.1ml
0.5mol/dm3 EDTA（pH 值 8．0） 100ml
（8）10× BPB 貯存液
聚蔗糖 20%
EDTA 0.2mol/dm3
溴酚藍 0.25 %
二甲基腈藍 0.25%
本貯存液可在室溫存放。
（9）40mmol/dm3 亞精胺
亞精胺 0.58g
將亞精胺溶於 10ml 蒸餾水中，4℃下存放。
（10）溴化乙錠（EtBr）貯存液 （10mg/ml）
EtBr 1g
將EtBr 溶於 100ml 蒸餾水中，在棕色瓶存放，溫度保持在 4℃。
（11）變性液
NaCl 1.5mol/dm3
NaOH 0.5mol/dm3
（12）20×SSC（1 000ml）
NaCl 175.3g
檸檬酸鈉 88.2g
用 10mol/dm3 NaOH 調 pH 值至 7．0，高壓滅菌。
（13）雜交液
NaPO4 0.5mol/dm3
SDS 7 %
EDTA 1mmol/dm3
（14）標記反應終止液
聚葡萄糖藍 0.9%
溴甲酚紫 0.03%
EDTA 20mmol/dm3
4℃下存放。
（15）SephadexG-50 的水化
SephadexG-50 10g
將 SephadexG-50 溶於約 300ml TE（pH 值 8．0）中，高壓滅菌，4℃下存放。
（16）閃爍液（500ml）
無水乙醇 10ml
PPO 2g
PoPoP 50mg
二甲苯 490ml
室溫棕色瓶存放。
2.3 操作步驟
2.3.1 基因組DNA 的提取
（1）10ml 全血與 40mlT10E10 緩沖液混勻，4 000r/min 離心10 分鍾。
（2）棄上清液，在沉澱中加入 40mlT10E10 緩沖液混勻，4 000r/min 離心 10 分鍾。
（3）棄上清液，在沉澱中加入 40mlTE 緩沖液混勻，4 000r/min 離心 10 分鍾。
（4）棄上清液，在沉澱中加入10mlUSSTE 裂解液，混勻呈濁液，置搖床過夜，溫度保持
在37℃。
（5）加入 10ml 苯酚，緩慢上下混勻至少 20 分鍾，4 500r/min 離心 20 分鍾。
（6）用移液槍小心地將上層水相轉移到另一離心管中，吸頭的尖端剪去一小段，以免在
吸取過程中損傷大分子DNA。
（7）向水相中加入等體積的酚、氯仿、異戊醇（體積比為24:23:1），緩慢上下混勻15
分鍾，4 500r/min 離心20 分鍾。
（8）如前述吸出水相，向水相中加入等體積的氯仿、異戊醇（23:1），上下緩慢混合10
分鍾，4 500r/min 離心 20 分鍾。
（9）吸出水相，向水相中加入2 倍體積的預冷（—20℃）無水乙醇，蓋緊管蓋，上下顛
倒即可看見白色絮狀DNA。
（10）小心將絮狀DNA 吸（吸頭尖端剪去一小段，端部必須光滑）至1 .5ml 離心管中，加
入 1ml 70%的乙醇，來回顛倒數次離心管，10 000r/min 離心 2～5 分鍾。
（11）小心地倒掉管中乙醇，將管倒置在干凈的吸水紙上，以讓乙醇流盡。
（12）將離心管正立，置45℃烘箱中烤20 分鍾左右，以便讓乙醇完全揮發掉，如有條件，
可置於真空乾燥器中抽氣10 分鍾。
（13）取出離心管，視沉澱塊的大小加入 100～200μl TE 緩沖液，置55℃水浴中過夜，以
溶解 DNA。
（14）將溶解後的 DNA 置於 4℃或—20℃下貯存。
2.3.2 基因組DNA 的酶切
（1）每樣酶切反應為：
10μg DNA
1.5ml（15u） 限制性內切酶
6μl 10 倍 buffer
6μl 40mmol/dm3 亞精胺
加雙蒸水至體積為60μl，用吸頭混勻。
（2）37℃水浴，保持6～8 小時。
（3）取出酶切樣品置於4℃下。
2.3.3 基因組DNA 酶切情況檢查
（1）從每個酶切樣品中取出3μl 消化液，加入3μl 2 倍BPB 混勻後點樣。
（2）用 0.8%瓊脂糖凝膠（內含 0.5μg/ml EtBr）和 1 倍TAE 緩沖液進行電泳，電壓為60V。
（3）1 小時後，在紫外燈下檢查酶切是否完全及各樣品的DNA 濃度是否一致，以確保每
個樣品進行電泳時上樣量一致。
（4）如果發現某個樣品酶切不完全，則另外加入5μl 左右的酶，在37℃條件下水浴保溫6 小時。
（5）已完全酶切的樣品，加入1/10 體積（6μl）的電泳上樣緩沖液（10 倍BPB），混勻
後置4℃（短期）或—20℃（長期）保存。
2.3.4 大板凝膠的制備和電泳
（1）稱取3.75g 瓊脂糖，將其倒入一個500ml 容積的普通試劑瓶（透明度要高）中。用
蒸餾水將50 倍TAE 貯存液稀釋成1 倍TAE， 量取375ml 1 倍TAE 加入瓶中， 配製的凝膠
濃度為 1.0% 。
（2）蓋上瓶蓋，但不能旋得太緊。將瓶放入微波爐中加熱，待瓊脂糖完全熔化後，溶液
是透明的。
（3）取出瓶子放在55℃的水浴箱中，約30 分鍾後就能冷卻至55℃。
（4）洗凈並擦乾制膠板（24cm ×22cm），用 2cm 左右寬的透明膠布將制膠板的兩個開口
端封牢，放置在水平檯面上用水平儀調平。將樣品梳（ 6mm × 3mm ）插入制膠板離最近開口
端 2cm 位置。將冷卻至55℃的凝膠搖勻，緩慢地倒入制膠板中央，如果有氣泡出現，應用吸
頭將氣泡吸掉，60 分鍾後，制膠板中的凝膠將完全凝固。
（5）將 50ml 50 倍 TAE 貯存液倒入電泳槽中，再加入 2 450ml 蒸餾水與其混勻，電泳槽
也應置於水平檯面上。
（6）將制膠板兩端的透明膠布剝離，然後將制膠板放在電泳槽的中部，小心地拔出加樣
梳，以免加樣孔破裂。
（7）從 4℃冰箱中取出 DNA 樣品，另取兩個離心管，各加入 12μl（1μg/8μl）的分子量
標志物λDNA/EcoRⅠ+Hind Ⅲ 及 1/10 體積的（1.2μl）10 倍 BPB，混勻。將 DNA 樣品及
分子量標記物一起置於55℃水浴箱保溫10 分鍾，取出後立即置於冰水混和物中，2～3 分鍾後
點樣，這樣可防止粘性末端之間的粘接。
（8）加樣時每個樣品用一個吸頭，以免交叉污染。吸出樣品後應迅速插入加樣孔中下部，
輕輕推出樣品，在兩端加樣孔中各點入分子量標志物。
（9）蓋上電泳槽蓋，插上導線，在加樣後5 分鍾接通電流，以留出時間使加樣孔內的樣
品通過擴散而均勻分布，將電壓調至30V，電泳60 小時。
2.3.5 Southern 轉移
（1）電泳結束後，將制膠板連同凝膠一起放在一個方形塑料盤中，倒入約350ml（浸沒凝
膠）的 0.2mol/dm3HCl 處理 25 分鍾，並每過約5 分鍾搖動一次。
（2）倒掉稀鹽酸溶液，加入蒸餾水簡單地洗滌一下凝膠，然後倒掉蒸餾水，加入約350ml
的變性液浸泡30 分鍾，間斷性地搖動。
（3）倒掉變性液，加入350ml 0.5 倍變性液浸泡 25 分鍾，間斷性地搖動。
（4）將制膠板連同凝膠一起取出，將一塊約28cm×19.5cm 的玻璃板蓋在凝膠上，極其小
心地將制膠板倒翻過來，這時玻璃板在下，凝膠在上，輕輕地滑出制膠板，將玻璃板連同其
上的凝膠放在水平的桌面上。
（5）將一張20cm×19cm 的尼龍膜（註明樣品排列方向及電泳方向）在0.5 倍變性液中浸
濕，然後對齊凝膠小片段區域的頂端將尼龍膜鋪在凝膠的表面，用一根玻璃棒從膜的表面推
過以趕走膜與凝膠之間的氣泡，用牆紙刀切除掉凝膠的無用部分（未被尼龍膜覆蓋住的部
分）。操作時應戴上手套或用鑷子。
（6）將3 張稍大於膜的濾紙（20cm×20cm）依次在 0.5 倍變性液中浸濕，放置在膜上，每
放一張濾紙後都應用玻璃棒輕輕趕走氣泡。
（7）將一打（約4～5cm 厚）已裁至濾紙大小的干吸水紙放在濾紙層上，再將一塊玻璃板
放在吸水紙上，然後抓緊上下兩塊玻璃板迅速翻轉放在水平桌面上，抽去凝膠上面的玻璃板。
（8）在凝膠的四周露出的濾紙及吸水紙上放上保鮮膜，以防止凝膠上下的濾紙直接接觸。
然後將 5 張稍大於凝膠的濾紙（20cm ×20cm）依次在 0.5 倍變性液中浸濕，放置在膜上，每
放一張濾紙後都應用玻璃棒輕輕趕走氣泡。
（9）用一層保鮮膜將整個轉移裝置圍蓋住，以防水分蒸發，將一塊玻璃板壓在頂部。
（10）持續轉移3～4 小時後，去掉上面的濾紙和凝膠，取下尼龍膜放在2 倍SSC 中浸泡
20 分鍾，間斷性搖動，然後取出放在一張干凈的濾紙上，置60℃烘箱中烘30 分鍾，使DNA
固定於尼龍膜上。
（11）將烤乾的膜夾在兩張乾燥濾紙之間，置於室溫下保存待用。
2.3.6 探針的標記
（1）將80ng 探針DNA（體積<30μl）倒進一個新的0.5ml 離心管中，在沸水中煮5～10
分鍾，取出，插入碎冰中。
（2）然後依次在試管中加入下列成分：10μl 5 倍標記緩沖液（含隨機引物），2μl BSA
（10mg/ml），2μl dATP、dGTP、dTTP 等量混合物（濃度為各 20μmol/dm3）；30μl 滅菌蒸餾
水，50μl（α-32P）dCTP（10μCi/μl，3 000Ci/mmol）（至濃度為 333nmol/dm3）；lμl Klenow
酶（3u/μl）；最後體積為 50μl。
（3）將全部試劑混勻後置37℃保溫壺中保溫6 小時。
（4）加入等體積（50μl）的標記反應終止液終止反應。
2.3.7 未摻入核苷酸前體的除去
（1）取一0.5ml 離心管，在管底部打一小孔，用玻璃棉塞住小孔，外套一個1.5ml 離心
管。
（2）向0.5ml 的管中加滿TE 飽和的Sephadex G-50。
（3）3 000r/min 離心 5 秒鍾，重新加滿Sephadex G-50 後再離心，直到 Sephadex G-50
加滿0.5ml 小管的3/4。
（4）將標記反應液加入 0.5ml 管中，3 000r/min 離心數秒鍾。
（5）將1.5ml 管中的液體（藍色）移入另一1.5ml 離心管中。
（6）向0.5ml 管中加入 40μl TE，3 000r/min 離心數秒鍾。
（7）重復（5）、（6）步驟2～3 次，直到凝膠中的紫色即將到達0.5ml 管底部。
（8）將回收的探針置於4℃下待用。
2.3.8 探針放射性強度的測定
（1）取兩個液閃瓶，各加2ml 閃爍液。
（2）在其中一個液閃瓶內加入2μl 原標記反應液。
（3）在另一個液閃瓶內加人2μl 去除了未摻入核苷酸的回收液。
（4）將2 個液閃瓶置於液閃儀中，測定其cpm。
2.3.9 Southern 雜交
（1）將 25ml 雜交液放入方形塑料盒中，於 55℃下預熱。
（2）將待雜交的膜和雜交液一起放入水浴搖床中。
（3）在55℃下預雜交1.5 小時左右。
（4）將放射性探針放在沸水中5 分鍾，取出後迅速插入冰水中。
（5）在雜交液中按5×105cpm/ml 的濃度加入變性的探針。
（6）在55℃下雜交約15 小時。
（7）將雜交液中的膜取出，放入1 倍SSC 溶液中於55℃下漂洗10 分鍾。
（8）倒去1 倍SSC 溶液，在55℃下用1 倍SSC 溶液及0.1 %SDS 洗脫液漂洗40 分鍾。
（9）倒去洗脫液，55℃下用新的1 倍SSC 溶液及0.l%SDS 洗脫液漂洗30 分鍾。
（10）將膜放入1 倍SSC 溶液中，於室溫下漂洗10 分鍾。
（11）取出膜，平攤在潔凈、乾燥的濾紙上。
（12）當膜上無水珠、膜仍濕潤時，用保鮮膜將膜包好准備壓片。
2.3.10 放射自顯影
（1）在暗室或微弱安全光條件下，打開X 光曝光暗盒。
（2）放入一張增感屏，光滑面朝上。
（3）將膜放在增感屏上（膜與膜之間不能重疊）。
（4）置X 光膠片於膜上。
（5）將另一張增感屏光滑面朝下放在X 光膠片上。
（6）蓋緊X 光暗盒，置—70℃冰箱內曝光1～7 天。
2.3.11 X 光膠片的沖洗
（1）顯影：將X 光膠片從暗盒中取出，放入顯影液中，間斷性搖動數分鍾。
（2）停顯影：將X 光膠片放入1.5%的冰醋酸溶液中漂洗數秒鍾。
（3）定影：將X 光膠片轉入定影液中定影數分鍾。
（4）沖洗：將定影完畢的X 光膠片放在流水中沖洗20 分鍾，然後晾乾。
2.3.12 放射性探針的除去
（1）將300～500ml 蒸餾水煮沸。
（2）往蒸餾水中加SDS，至最終濃度0.l%。
（3）將放射自顯影後的膜浸入其中。
（4）待冷卻至室溫時將膜取出、烘乾，即可用於另一種探針的雜交。

Ⅳ 質量相同50°C的蒸餾水0°C的冰激凌哪個熱量大

你把概念搞混了吧， 食物的熱量是營養學概念，食物中能產生熱量的營養素（蛋白質、脂肪和碳水化合物），它們經過氧化產生熱量供身體維持生命、生長發育和運動。熱能供給過多時，多餘的熱量就會變成脂肪貯存起來，時間久了，身體就胖起來了。 營養學中用「千卡」做熱量的單位，計算食物或飲食所含的熱量，首先要知道其中熱量營養素的重量，然後利用以下公式計算： 熱量(大卡)＝醣類克數×4＋蛋白質克數×4＋脂肪克數×9＋酒精克數×7＋有熱量的需要＝熱量的消耗 從營養學角度講，自然是冰激凌熱量高了。蒸餾水裡什麼營養素都沒有啊。

Ⅳ 蒸餾水怎麼燒

比較簡單的方法是:
拿一大一小兩個干凈容器(注意小的要特別干凈),在大的容器里乘專點水(最好是熱水),然後把小容器放屬進去(水不要淹過容器),用保鮮膜把大的容器口封住,在保鮮膜中央放以塊小石子之類的東西,使凹下去的地方正對著小容器口.
然後就可以在邊上坐著等了~
原理:容器內的水蒸發後,水蒸氣遇到保鮮膜放熱液化,形成水珠,然後順著斜面流下,正好落到小容器里,就是干凈的蒸餾水了~
如果滿意記得採納哦！
你的好評是我前進的動力。
(*^__^*) 嘻嘻……
我在沙漠中喝著可口可樂，唱著卡拉ok，騎著獅子趕著螞蟻，手中拿著鍵盤為你答題！！！

Ⅵ 配置瓊脂糖膠時,可以用蒸餾水和高濃度的TAE液嗎

1.用蒸餾水將制膠工具洗干凈 准備好制膠平板 用瓊脂將模具邊緣封閉 架好梳回子
2.根據要分離的答樣品（DNA）大小配製合適濃度的瓊脂凝膠 准確的稱取一定量的瓊脂糖乾粉 加入到合適體積的錐形瓶中 加入一定量的電泳緩沖液（30ml左右TAE） 放入到微波爐內加熱融化 冷卻片刻（不燙手即可）
3.融化後的瓊脂溶液搖晃混勻 倒入電泳槽中 等其凝固
4.室溫下凝固30-40min左右 小心的拔出梳子 取出凝固好的凝膠放入電泳槽內 准備上樣
5.在電泳槽中倒入電泳緩沖液（TAE）沒過膠面1mm左右 去除膠孔內的氣泡
6.上樣 5ulDNA樣品加入1ul上樣緩沖液（loading buffer）和1ul的染料 用搶混勻後加入到凝膠孔內
.上樣結束 接通電源 紅色正極 黑色負極 DNA樣品有負極往正極運動 加樣孔側為負 40-50v電壓 電壓30敏左右即可（< 40min）
8.電壓結束 關閉電源 凝膠成像儀上觀察電壓位置並比對marker判斷大小

Ⅶ 蒸餾水和普通水 礦泉水有什麼不同

其實喝什麼水都好，主要是補充H2O分子。
1.有些人說礦泉水含有礦物質，補充礦物質。又有人說不能喝太多礦泉水，會長結石。其實這都是不科學的，因為礦泉水裡面的礦物質含量確實太低了，這么微量的礦物質不會對身體有什麼重大的影響，更不會說長出結石。很多時候長結石都是因為水喝得不夠造成的，引起尿液濃縮，草酸析出和鈣結合形成結石。
所以無論礦泉水、自來水還是蒸餾水都好，其區別很少。沒有說好壞。
桶裝水頻頻出現衛生問題，有些牌子的直接用自來水來冒充，畢竟沒有經過消毒，所以還是對身體不好的。還是挑牌子好的或者喝的時候加熱過。
2.用蒸餾方法制備的純水。可分一次和多次蒸餾水。水經過一次蒸餾，不揮發的組分（鹽類）殘留在容器中被除去，揮發的組分（氨、二氧化碳、有機物）進入蒸餾水的初始餾分中，通常只收集餾分的中間部分，約佔60％。要得到更純的水，可在一次蒸餾水中加入鹼性高錳酸鉀溶液，除去有機物和二氧化碳；加入非揮發性的酸（硫酸或磷酸），使氨成為不揮發的銨鹽。由於玻璃中含有少量能溶於水的組分，因此進行二次或多次蒸餾時，要使用石英蒸餾器皿，才能得到很純的水，所得純水應保存在石英或銀制容器內。
3.重水(或稱氘化水，化學式D2O或者2H2O)是水的一種，它的質量比一般水要重。普通的水(H2O)是由兩個只有質子的氫原子和一個氧16原子所組成，但在重水分子內的兩個氫同位素，比一般氫原子有各多一個中子，因此造成重水分子的質量比一般水要重。在自然界中，重水的含量很少。
由於普通水和重水都是由相同數量的氫和氧原子組成，兩者的化學反應皆會接近相同。但在物理上，重水的溶點和沸點比普通水稍高，在一個大氣壓力下，重水的溶點是攝氏3.82度，沸點是攝氏101.4度。
密度方面，在攝氏20度和一個大氣壓力的環境下，重水的密度是1.105g/cm3。由於重水比普通水不容易被電解為氫和氧，以及與普通水相比，其含量稀少的關系，人們便以電解的方式來提煉純度更高的重水。因此，重水的價格也比較昂貴。
有另一種重水稱為半重水，HDO，它只有一個氫原子是多一個中子的重氫。一般的半重水都並不純正，通常是50%HDO，25%的H2O
及
25%的D2O。

Ⅷ 蒸餾水在50度的PH值是否小於7

是的，pH值小於7， 但仍然是中性， pH值的計算方法不管多少度都是一樣的， 但中性pH值在不同的溫度有所不同。（和Kw有關系）

Ⅸ 稀釋50*TAE溶液到1*TAE是用蒸餾水還是一般的水

做膠的TAE當然用雙蒸水

如果是槽中使用的電泳緩沖液，單蒸水也可以

Ⅹ 剃度稀釋都用蒸餾水還是用溶解溶劑

做膠的TAE當然用雙蒸水
如果是槽中使用的電泳緩沖液,單蒸水也可以