『壹』 純化水中的微生物檢測怎麼做 要詳細
採用濾膜法進來行微生物檢測源是一種國際公認的微生物標准檢驗方法，其得到AOAC、美國、歐洲和日本等國家的葯典、FDA和EPA等組織的承認，廣泛應用於環境監測、食品及飲料工業、化妝品、制葯工業品質控制和電子工業等領域。賽多利斯公司的濾膜法微生物檢測產品成功地應用於濾膜法已有20多年的歷史，實用而且方便實用，它簡化了微生物檢測程序。
濾膜法微生物檢測：
將適當孔徑的濾膜放入濾器，過濾樣品，由於濾膜的作用而將微生物保留在膜的表面上。樣品中微生物生長抑制劑可在過濾後用無菌水沖洗濾器而除去。然後，將濾膜放在培養基上培養，營養物和代謝物通過濾膜的微孔進行交換，在濾膜表面上培養出的菌落可以計數，並和樣品量相關。
濾膜法的優點：
- 與直接法比較，可以檢測大量的樣品
- 濃縮效應使微生物檢測的准確度提高
- 帶有菌落的濾膜，可作為檢測的永久記錄存檔
- 可見的菌落和樣品量直接對應，得出定量結果
操作具體一點就是：薄膜過濾法檢測，一個樣過濾一份，就是200ml的純化水通過濾膜，將該濾膜浸泡在滅菌好的l生理鹽水中，再接種到平皿中，製成10級、100級、1000級稀釋倍數的細菌、黴菌和酵母菌稀釋培養皿，即可
『貳』 您好，我想請教一下食品菌落總數計算方法，和怎麼做出廠檢驗報告
1 范圍
本標准規定了食品中菌落總數（Aerobic plate count）的測定方法。
本標准適用於食品中菌落總數的測定。
2 術語和定義
2.1 菌落總數 aerobic plate count
食品檢樣經過處理，在一定條件下（如培養基、培養溫度和培養時間等）培養後，所得每g（mL）檢樣中形成的微生物菌落總數。
3 設備和材料
除微生物實驗室常規滅菌及培養設備外，其他設備和材料如下：
3.1 恆溫培養箱：36 ℃±1 ℃，30 ℃±1 ℃。
3.2 冰箱：2 ℃～5 ℃。
3.3 恆溫水浴箱：46 ℃±1 ℃。
3.4 天平：感量為0.1 g。
3.5 均質器。
3.6 振盪器。
3.7 無菌吸管：1 mL（具0.01 mL 刻度）、10 mL（具0.1 mL 刻度）或微量移液器及吸頭。
3.8 無菌錐形瓶：容量250 mL、500 mL。
3.9 無菌培養皿：直徑90 mm。
3.10 pH 計或pH 比色管或精密pH 試紙。
3.11 放大鏡或/和菌落計數器。
4 培養基和試劑
4.1 平板計數瓊脂培養基：見附錄A 中A.1。
4.2 磷酸鹽緩沖液：見附錄A 中A.2。
4.3 無菌生理鹽水：見附錄A 中A.3。
5 檢驗程序
菌落總數的檢驗程序見圖1。
圖
1 菌落總數的檢驗程序
6 操作步驟
6.1 樣品的稀釋
6.1.1 固體和半固體樣品：稱取25 g 樣品置盛有225 mL 磷酸鹽緩沖液或生理鹽水的無菌均質杯內，8000 r/min～10000 r/min 均質1 min～2 min，或放入盛有225 mL 稀釋液的無菌均質袋中，用拍擊式均質器拍打1 min～2 min，製成1:10 的樣品勻液。
6.1.2 液體樣品：以無菌吸管吸取25 mL 樣品置盛有225 mL 磷酸鹽緩沖液或生理鹽水的無菌錐形瓶（瓶內預置適當數量的無菌玻璃珠）中，充分混勻，製成1:10 的樣品勻液。
6.1.3 用1 mL 無菌吸管或微量移液器吸取1:10 樣品勻液1 mL，沿管壁緩慢注於盛有9 mL 稀釋液的無菌試管中（注意吸管或吸頭尖端不要觸及稀釋液面），振搖試管或換用1 支無菌吸管反復吹打使其混合均勻，製成1:100 的樣品勻液。
6.1.4 按6.1.3 操作程序，制備10 倍系列稀釋樣品勻液。每遞增稀釋一次，換用1 次1 mL 無菌吸管或吸頭。
6.1.5 根據對樣品污染狀況的估計，選擇2 個～3 個適宜稀釋度的樣品勻液（液體樣品可包括原液），在進行10 倍遞增稀釋時，吸取1 mL 樣品勻液於無菌平皿內，每個稀釋度做兩個平皿。同時，分別吸取1 mL 空白稀釋液加入兩個無菌平皿內作空白對照。
6.1.6 及時將15 mL～20 mL 冷卻至46 ℃的平板計數瓊脂培養基（可放置於46 ℃±1 ℃恆溫水浴箱中保溫）傾注平皿，並轉動平皿使其混合均勻。
6.2 培養
6.2.1 待瓊脂凝固後，將平板翻轉，36 ℃±1 ℃培養48 h±2 h。水產品30 ℃±1 ℃培養72 h±3 h。
6.2.2 如果樣品中可能含有在瓊脂培養基表面彌漫生長的菌落時，可在凝固後的瓊脂表面覆蓋一薄層瓊脂培養基（約4 mL），凝固後翻轉平板，按6.2.1 條件進行培養。
6.3 菌落計數
可用肉眼觀察，必要時用放大鏡或菌落計數器，記錄稀釋倍數和相應的菌落數量。菌落計數以菌落形成單位（colony-forming units，CFU）表示。
6.3.1 選取菌落數在30 CFU～300 CFU 之間、無蔓延菌落生長的平板計數菌落總數。低於30 CFU 的平板記錄具體菌落數，大於300 CFU 的可記錄為多不可計。每個稀釋度的菌落數應採用兩個平板的平均數。
6.3.2 其中一個平板有較大片狀菌落生長時，則不宜採用，而應以無片狀菌落生長的平板作為該稀釋度的菌落數；若片狀菌落不到平板的一半，而其餘一半中菌落分布又很均勻，即可計算半個平板後乘以2，代表一個平板菌落數。
6.3.3 當平板上出現菌落間無明顯界線的鏈狀生長時，則將每條單鏈作為一個菌
『叄』 求助微生物菌落總數結果報告怎麼出
7.1菌落總數的計算方法7.1.1若只有一個稀釋度平板上的菌落數在適宜計數范圍內，計算兩個平板菌落數的平均值，再將平均值乘以相應稀釋倍數，作為每g（mL）樣品中菌落總數結果。7.1.2若有兩個連續稀釋度的平板菌落數在適宜計數范圍內時，按公式（1）計算：（1）式中：N——樣品中菌落數；∑C——平板（含適宜范圍菌落數的平板）菌落數之和；n1——第一稀釋度（低稀釋倍數）平板個數；n2——第二稀釋度（高稀釋倍數）平板個數；。d——稀釋因子（第一稀釋度）若所有稀釋度的平板上菌落數均大於300CFU，則對稀釋度最高的平板進行計數，其他平板可7.1.3記錄為多不可計，結果按平均菌落數乘以最高稀釋倍數計算。若所有稀釋度的平板菌落數均小於30CFU，則應按稀釋度最低的平均菌落數乘以稀釋倍數計7.1.4算。7.1.5若所有稀釋度（包括液體樣品原液）平板均無菌落生長，則以小於1乘以最低稀釋倍數計算。若所有稀釋度的平板菌落數均不在30CFU～300CFU之間，其中一部分小於30CFU或大於3007.1.6CFU時，則以最接近30CFU或300CFU的平均菌落數乘以稀釋倍數計算。這里有個例子參考一下以上是中的計算方法。
『肆』 純化水微生物怎麼算
薄膜過濾法，計數，每1ml純化水不得過100個，具體方法：
大腸菌群的檢查：取含培養基10 ml的乳專糖膽鹽發酵管屬若干支，分別加入供試水樣1 ml。另取乳糖膽鹽發酵培養基管1支加1ml洗液為陰性對照組，於36±1℃培養18～24 h。陰性對照應無菌生長。供試品乳糖膽鹽發酵管若無菌生長，或有菌生長但不產酸產氣或產酸不產氣，判該管未檢出大腸菌群。
黴菌及酵母菌計數：純化水取水樣1ml，均做平行，並做陰性對照，經直徑為50 mm、孔徑0.45μm 的薄膜過濾器過濾，小心取出濾膜，菌面向上貼於玫瑰紅鈉培養基平板上，將培養皿倒置於培養箱中，於23～28℃培養5天（可延長到7天），菌落計數；
細菌計數：純化水取水樣1 ml，並做陰性對照，經直徑為50 mm、孔徑0.45μm 的薄膜過濾器過濾，小心取出濾膜，菌面向上貼於營養瓊脂培養基平板上，將培養皿倒置於培養箱中，於30～35℃培養72 h，菌落計數
判定標准：純化水每片濾膜上微生物菌落總數不超過100 cfu，不得檢出大腸菌群；
『伍』 食品微生物學檢驗 菌落總數測定報告怎麼寫
食品微生物學檢驗 菌落總數測定
1 范圍
本標准規定了食品中菌落總數（Aerobic plate count）的測定方法。
本標准適用於食品中菌落總數的測定。
2 術語和定義
2.1 菌落總數 aerobic plate count
食品檢樣經過處理，在一定條件下（如培養基、培養溫度和培養時間等）培養後，所得每g（mL）檢樣中形成的微生物菌落總數。
3 設備和材料
除微生物實驗室常規滅菌及培養設備外，其他設備和材料如下：
3.1 恆溫培養箱：36 ℃±1 ℃，30 ℃±1 ℃。
3.2 冰箱：2 ℃～5 ℃。
3.3 恆溫水浴箱：46 ℃±1 ℃。
3.4 天平：感量為0.1 g。
3.5 均質器。
3.6 振盪器。
3.7 無菌吸管：1 mL（具0.01 mL 刻度）、10 mL（具0.1 mL 刻度）或微量移液器及吸頭。
3.8 無菌錐形瓶：容量250 mL、500 mL。
3.9 無菌培養皿：直徑90 mm。
3.10 pH 計或pH 比色管或精密pH 試紙。
3.11 放大鏡或/和菌落計數器。
4 培養基和試劑
4.1 平板計數瓊脂培養基：見附錄A 中A.1。
4.2 磷酸鹽緩沖液：見附錄A 中A.2。
4.3 無菌生理鹽水：見附錄A 中A.3。
5 檢驗程序
菌落總數的檢驗程序見圖1。
圖
1 菌落總數的檢驗程序
6 操作步驟
6.1 樣品的稀釋
6.1.1 固體和半固體樣品：稱取25 g 樣品置盛有225 mL 磷酸鹽緩沖液或生理鹽水的無菌均質杯內，8000 r/min～10000 r/min 均質1 min～2 min，或放入盛有225 mL 稀釋液的無菌均質袋中，用拍擊式均質器拍打1 min～2 min，製成1:10 的樣品勻液。
6.1.2 液體樣品：以無菌吸管吸取25 mL 樣品置盛有225 mL 磷酸鹽緩沖液或生理鹽水的無菌錐形瓶（瓶內預置適當數量的無菌玻璃珠）中，充分混勻，製成1:10 的樣品勻液。
6.1.3 用1 mL 無菌吸管或微量移液器吸取1:10 樣品勻液1 mL，沿管壁緩慢注於盛有9 mL 稀釋液的無菌試管中（注意吸管或吸頭尖端不要觸及稀釋液面），振搖試管或換用1 支無菌吸管反復吹打使其混合均勻，製成1:100 的樣品勻液。
6.1.4 按6.1.3 操作程序，制備10 倍系列稀釋樣品勻液。每遞增稀釋一次，換用1 次1 mL 無菌吸管或吸頭。
6.1.5 根據對樣品污染狀況的估計，選擇2 個～3 個適宜稀釋度的樣品勻液（液體樣品可包括原液），在進行10 倍遞增稀釋時，吸取1 mL 樣品勻液於無菌平皿內，每個稀釋度做兩個平皿。同時，分別吸取1 mL 空白稀釋液加入兩個無菌平皿內作空白對照。
6.1.6 及時將15 mL～20 mL 冷卻至46 ℃的平板計數瓊脂培養基（可放置於46 ℃±1 ℃恆溫水浴箱中保溫）傾注平皿，並轉動平皿使其混合均勻。
6.2 培養
6.2.1 待瓊脂凝固後，將平板翻轉，36 ℃±1 ℃培養48 h±2 h。水產品30 ℃±1 ℃培養72 h±3 h。
6.2.2 如果樣品中可能含有在瓊脂培養基表面彌漫生長的菌落時，可在凝固後的瓊脂表面覆蓋一薄層瓊脂培養基（約4 mL），凝固後翻轉平板，按6.2.1 條件進行培養。
6.3 菌落計數
可用肉眼觀察，必要時用放大鏡或菌落計數器，記錄稀釋倍數和相應的菌落數量。菌落計數以菌落形成單位（colony-forming units，CFU）表示。
6.3.1 選取菌落數在30 CFU～300 CFU 之間、無蔓延菌落生長的平板計數菌落總數。低於30 CFU 的平板記錄具體菌落數，大於300 CFU 的可記錄為多不可計。每個稀釋度的菌落數應採用兩個平板的平均數。
6.3.2 其中一個平板有較大片狀菌落生長時，則不宜採用，而應以無片狀菌落生長的平板作為該稀釋度的菌落數；若片狀菌落不到平板的一半，而其餘一半中菌落分布又很均勻，即可計算半個平板後乘以2，代表一個平板菌落數。
6.3.3 當平板上出現菌落間無明顯界線的鏈狀生長時，則將每條單鏈作為一個菌
『陸』 2015版葯典 純化水微生物限度檢查結果菌落總數怎麼算
叫cfu，簇
就是經過培養後，一小簇就算1（不一定是一個）
『柒』 食品菌落總數怎麼寫
平板菌落數都小於30，以最低稀釋度菌落數（兩板平均後）乘以稀釋度報告之。然後再根據三級采樣標准要求判斷是否合格。
參考金葡三級采樣的表示方法，其中n,c,m,M值寫你們的標准值，＜10那幾個寫具體數值，最後判斷欄寫合格或不合格（根據檢驗結果判斷後）。
『捌』 純凈水檢驗菌落總數結果怎麼計數
可用肉眼觀察，必要時用放大鏡檢查。以防遺漏。在記下各平板的相應稀釋倍數和菌落數後，求出同稀釋度的各平板平均菌落總數。菌落計數以菌落形成單位（CFU）表示。
『玖』 菌落總數原始記錄怎麼寫
菌落總數測定具體操作步驟可以下載國標 網上有的 ，最好用最新版的，記錄表填寫3個然後取平均數。
是否可以解決您的問題？
『拾』 純凈水微生物原始記錄怎麼填寫
你是說單位的表單啊，還是學校的實驗單啊