質粒DNA超濾

⑴ 肝臟DNA的提取和質粒DNA提取在原理上的顯著區別

不同點

一、提取方法不同

DNA提取主要是CTAB方法，其他的方法還有物理方式如玻璃珠法、超聲波法、研磨法、凍融法。化學方式如異硫氰酸胍法、鹼裂解法。生物方式：酶法。

質粒抽提方法即去除 RNA，將質粒與細菌基因組 DNA分開，去除蛋白質及其它雜質，以得到相對純凈的質粒。

二、提取原理不同

質粒DNA提取用到三種溶液以及硅酸纖維膜（超濾柱）。 溶液Ⅰ：50 mM葡萄糖 / 25 mMTris-HCl/ 10 mMEDTA，pH 8.0；溶液Ⅱ：0.2 N NaOH / 1%SDS； 溶液Ⅲ：3 M 醋酸鉀/ 2 M 醋酸/75%酒精。

細胞基因組DNA提取

保證核酸一級結構的完整性；核酸樣品中不應存在對酶有抑製作用的有機溶劑和過高濃度的金屬離子；其他生物大分子如蛋白質、多糖和脂類分子的污染應降低到最低程度；其他核酸分子，如RNA，也應盡量去除。

三、提取復雜程度不同

質粒DNA提取一般用沸水浴法和鹼裂解法，它主要是將細胞內的環狀質粒提取出來，一般需要用SDS裂解，RNA酶降解，然後過柱，再進行洗脫.過程比較簡單。

而基因組DNA提取則較為復雜，也需要用SDS裂解和RND酶降解，但降解時間較長，同時對有些革蘭氏陽性細菌還要進行溶菌酶處理，最後用氯仿-苯酚進行除蛋白，這一步重復進行多次，在用氯仿除去多餘的苯酚，用乙醇清洗烘乾後溶於TE緩沖液中。整個過程比提質粒更復雜，耗時也更長。

相同點

都是去除 RNA、除蛋白質及其它雜質。

⑵ 為了保證質粒dna純度和分子完整性，採取了哪些措施

為保證分離核酸的完整性及純度,應盡量簡化操作步驟,縮短操作時間,以減少各種不利因素對核酸的破壞,在實驗過程中,應注意以下條件及要求：①減少化學因
素對核酸的降避免過鹼、過酸對核酸鏈中磷酸二酯鍵的破壞,操作多在pH4~10條件下進行；②減少物理因素對核酸的降強烈振盪、攪拌,細胞突置於
低滲液中,細胞裂解,反復凍貯等造成的機械剪切力以及高溫煮沸等條件都能明顯破壞大分子量的線性DNA分子,對於分子量小的環狀質粒DNA及RNA分子,
威脅相對小一些；③防止核酸的生物降細胞內、外各種核酸酶作用於磷酸二酯鍵,直接破壞核酸的一級結構；DNA酶需要Mg2+、Ca2+的激
活,因此實驗中常利用金屬二價離子螯合劑EDTA,檸檬酸鹽,可基本抑制DNA酶的活性,而RNA酶,不但分布廣泛,極易污染,而且耐高溫、耐酸鹼,不
易失活,所以生物降解是RNA提取過程的主要危害因素.進行核酸分離時最好新鮮生物組織或細胞樣品,若不能馬上進行提取,應將材料貯存於液氮中或-70℃
冰箱中.

⑶ 質粒DNA是怎樣的

質粒是染色體外能夠進行自主復制的遺傳單位，包括真核生物的細胞器和細菌細胞中染色體以外的脫氧核糖核酸(DNA)分子。現在習慣上用來專指細菌、酵母菌和放線菌等生物中染色體以外的DNA分子。在基因工程中質粒常被用做基因的載體。許多細菌除了染色體外，還有大量很小的環狀DNA分子，這就是質粒(plasmid)（補充：部分質粒為RNA）。質粒上常有抗生素的抗性基因，例如，四環素抗性基因或卡那黴素抗性基因等。有些質粒稱為附加體(episome)，這類質粒能夠整合進細菌的染色體，也能從整合位置上切離下來成為游離於染色體外的DNA分子。 目前，已發現有質粒的細菌有幾百種，已知的絕大多數的細菌質粒都是閉合環狀DNA分子(簡稱cccDNA)。細菌質粒的相對分子質量一般較小，約為細菌染色體的0.5%～3%。根據相對分子質量的大小，大致上可以把質粒分成大小兩類：較大一類的相對分子質量是40×106以上，較小一類的相對分子質量是10×106以下(少數質粒的相對分子質量介於兩者之間)。每個細胞中的質粒數主要決定於質粒本身的復制特性。按照復制性質，可以把質粒分為兩類：一類是嚴緊型質粒，當細胞染色體復制一次時，質粒也復制一次，每個細胞內只有1～2個質粒；另一類是鬆弛型質粒，當染色體復制停止後仍然能繼續復制，每一個細胞內一般有20個左右質粒。一般分子量較大的質粒屬嚴緊型。分子量較小的質粒屬鬆弛型。質粒的復制有時和它們的宿主細胞有關，某些質粒在大腸桿菌內的復制屬嚴緊型，而在變形桿菌內則屬鬆弛型。 在基因工程中，常用人工構建的質粒作為載體。人工構建的質粒可以集多種有用的特徵於一體，如含多種單一酶切位點、抗生素耐葯性等。常用的人工質粒運載體有pBR322、pSC101。pBR322含有抗四環素基因(Tcr)和抗氨苄青黴素基因(Apr)，並含有5種內切酶的單一切點。如果將DNA片段插入EcoRI切點，不會影響兩個抗生素基因的表達。但是如果將DNA片段插入到Hind III、Bam H I 或 Sal I切點，就會使抗四環素基因失活。這時，含有DNA插入片段的pBR322將使宿主細菌抗氨苄青黴素，但對四環素敏感。沒有DNA插入片段的pBR322會使宿主細菌既抗氨苄青黴素又抗四環素，而沒有pBR322質粒的細菌將對氨苄青黴素和四環素都敏感。pSC101與pBR322相似，只是沒有抗氨苄青黴素基因和PstI切點。質粒運載體的最大插入片段約為10 kb(kb表示為千鹼基對)。

⑷ 質粒dna的提取實驗過程中現象

1.
實驗方法 鹼裂解法抽提質粒 DNA

2.
實驗原理 基於質粒 DNA 與染色體 DNA 變性與復性的差異. 分子大小 構型 pH12.6 pH4.8 質粒 DNA 小 環狀 變性不完全 復性 染色體 DNA 大 環狀 完全變性 不能復性

3.
實驗步驟 1)質粒提取 1. 10,000g,1min 離心收集 1.5-5ml 菌液沉澱於 1.5ml 離心管中.

⑸ 質粒小提試劑盒中的p1 p2 p3分別有什麼作用

p1：葡萄糖使懸浮後的大腸桿菌不會快速沉積到管子的底部；EDTA是Ca²⁺和Mg²⁺等二價金屬離子的螯合劑，其主要目的是為了螯合二價金屬離子從而達到抑制DNase的活性；可添加RNase A消化RNA。

p2：此步為鹼處理。其中NaOH主要是為了溶解細胞，釋放DNA，因為在強鹼性的情況下，細胞膜發生了從雙層膜結構向微囊結構的變化。SDS與NaOH聯用，其目的是為了增強NaOH的強鹼性，同時SDS作為陰離子表面活性劑破壞脂雙層膜。

p3：溶液III的作用是沉澱蛋白和中和反應。其中醋酸鉀是為了使鉀離子置換SDS中的鈉離子而形成了PDS，因為十二烷基硫酸鈉遇到鉀離子後變成了十二烷基硫酸鉀 ，而PDS是不溶水的，同時一個SDS分子平均結合兩個氨基酸，鉀鈉離子置換所產生的大量沉澱自然就將絕大部分蛋白質沉澱了。

2M的醋酸是為了中和NaOH。基因組DNA一旦發生斷裂，只要是50-100 kb大小的片斷，就沒有辦法再被 PDS共沉澱了，所以鹼處理的時間要短，而且不得激烈振盪，不然最後得到的質粒上總會有大量的基因組DNA混入，瓊脂糖電泳可以觀察到一條濃濃的總DNA條帶。

75%酒精主要是為了清洗鹽份和抑制Dnase；同時溶液III的強酸性也是為了使DNA更好地結合在硅酸纖維膜上。

(5)質粒DNA超濾擴展閱讀

質粒具有自主復制能力，使其在子代細胞中也能保持恆定的拷貝數，並表達所攜帶的遺傳信息。細菌質粒為DNA重組技術中常用的載體。載體，把一個有用的外源基因通過基因工程手段，送進受體細胞中去進行增殖和表達的工具。

將某種目標基因片段重組到質粒中，構成重組基因或重組體。然後將這種重組體經微生物學的轉化技術，轉入受體細胞（如大腸桿菌）中，使重組體中的目標基因在受體菌中得以繁殖或表達，從而改變寄主細胞原有的性狀或產生新的物質。

⑹ 質粒DNA瓊脂糖凝膠電泳中質粒超螺旋、開環、直鏈跑膠快慢次序是什麼

質粒DNA瓊脂糖凝膠電泳中質粒超螺旋、開環、直鏈跑膠快慢次序依次是超螺旋、直鏈、開環。

瓊脂糖凝膠電泳DNA 遷移速率與分子大小和構象相關，分子構象越大，摩擦阻力越大，第一條帶是超螺旋帶應該最亮，因為超螺旋結構完整緊密，跑得最快。第二條帶為直鏈線性質粒是雙鏈都斷開變成鬆弛的線性DNA，不如超螺旋緊密，跑得相對慢 。第三條帶為開環質粒，DNA雙鏈的其中一根斷開，導致超螺旋能量被釋放而使質粒變成鬆弛的環狀結構，結構臃腫，跑得最慢。

(6)質粒DNA超濾擴展閱讀：

瓊脂糖凝膠電泳DNA 遷移速率在於摩擦阻力的問題，瓊脂就像有孔海綿分子篩，細菌質粒提取中電泳會出現三條帶，最快的是超螺旋帶，它是完整的，因為它的構型緊密，跑得快。 第二條帶在中間，是直鏈帶，即環狀雙鏈DNA 兩條鏈均斷開，其分子構象變為線性，不如超螺旋緊密，跑得就慢一點。最慢的是開環帶，即環狀雙鏈DNA 有一條鏈斷開，拖著一條尾巴，顯得很臃腫，所以跑得最慢。

⑺ 質粒抽提原理

實驗原理
提取質粒DNA的方法有很多種，從提取產量上分可分為微量提取、中量提取、大量提取，從使用儀器上分可分為一般提取和試劑盒方法提取，從具體操作方法分可以分為鹼裂解法、煮沸法、牙簽法等，各種不同的方法各有其優缺點，根據不同的實驗目的可以採用合適的提取方法。詳細內容請參考《分子克隆實驗指南》。另外，復旦大學生化與分子生物學實驗室一篇文章，提供了質粒提取機理的詳細解說。[1]

鹼裂解法

人們使用鹼與SDS裂解法從E. coli（大腸桿菌）中分離制備質粒DNA已有30多年的歷史。將細菌懸浮液暴露於高pH值的強陰離子洗滌劑中，會使細胞壁破裂，染色體DNA和蛋白質變性，將質粒DNA釋放到上清中。

盡管鹼性溶劑使鹼基配對完全破壞，閉環的質粒DNA雙鏈仍不會彼此分離，這因為它們在拓撲學上是相互纏繞的。只要OH-處理的強度和時間不要太過，當pH值恢復到中性時，DNA雙鏈就會再次形成。在裂解過程中，細菌蛋白質、破裂的細胞壁和變性的染色體DNA會相互纏繞成大型復合物，後者被十二烷基硫酸鹽包蓋。當用K+取代Na+時，復合物會從溶液中有效地沉澱下來，離心除去變性劑後，就可以從上清中回收復性的質粒DNA。

在SDS存在的條件下，鹼水解是一項非常靈活的技術，它對E. coli的所有菌株都適用，並且其細菌培養物的體積可以從1-500mL以上。

煮沸法

煮沸法是將細菌懸浮於含有Triton X-100和能消化細胞壁的溶菌酶的緩沖液中，然後加熱到100℃使其裂解。加熱除了破壞細菌外壁，還有助於解開DNA鏈的鹼基配對，並使蛋白質和染色體DNA變性。但是。閉環質粒DNA鏈彼此不會分離，這是因為它們的磷酸二酯骨架具有互相纏繞的拓撲結構。當溫度下降後，閉環DNA的鹼基又各就各位，形成超螺旋分子，離心除去變性的染色體DNA和蛋白質，就可從上清中回收質粒DNA。煮沸裂解法對於小於15kb的小質粒很有效，可用於提取步至lmL（小量制備），多至250mL（大量制備）菌液的質粒，並且對大多數的大腸桿菌菌株都適用。但對於那些經變性劑、溶菌酶及加熱處理後能釋放大量碳水化合物的大腸桿菌菌株，則不推薦使用該法。這是因為碳水化合物很難除去，會抑制限制酶和聚合酶活性。若碳水化合物的量很大，在CsCl-溴化乙錠梯度離心中會使超螺旋質粒DNA帶變得模糊不清。大腸桿菌菌株HBl01及其衍生菌株（其中包括TGl）能產生大量的碳水化合物，不適於用煮沸法裂解。

質粒小提試劑盒

用於大腸桿菌中質粒DNA的小量提取，它結合了優化的鹼裂解法，以及方便快捷的硅膜離心技術，具有高效，快捷的特點，能在30min內完成全部操作。利用試劑盒能從1-5mL過夜培養的大腸桿菌菌液中純化得到10-40μg高質量的質粒DNA（OD260/OD280=1.7-1.9），此質粒DNA可直接用於DNA序列分析，各種酶促反應，PCR以及部分細胞系的轉染等。

質粒抽提
質粒抽提

原理
其中用到三種溶液以及硅酸纖維膜（超濾柱）。 溶液Ⅰ：50 mM葡萄糖 / 25 mMTris-HCl/ 10 mMEDTA，pH 8.0；溶液Ⅱ：0.2 N NaOH / 1%SDS； 溶液Ⅲ：3 M 醋酸鉀/ 2 M 醋酸/75%酒精。

溶液Ⅰ

葡萄糖是使懸浮後的大腸桿菌不會快速沉積到管子的底部；EDTA是Ca2+和Mg2+等二價金屬離子的螯合劑，其主要目的是為了螯合二價金屬離子從而達到抑制DNase的活性；可添加RNase A消化RNA。

溶液Ⅱ

此步為鹼處理。其中NaOH主要是為了溶解細胞，釋放DNA，因為在強鹼性的情況下，細胞膜發生了從雙層膜結構向微囊結構的變化。SDS與NaOH聯用，其目的是為了增強NaOH的強鹼性，同時SDS作為陰離子表面活性劑破壞脂雙層膜。這一步要記住兩點：第一，時間不能過長，因為在這樣的鹼性條件下基因組DNA片斷也會慢慢斷裂；第二，必須溫柔混合，不然基因組DNA會斷裂。

溶液Ⅲ

溶液III的作用是沉澱蛋白和中和反應。其中醋酸鉀是為了使鉀離子置換SDS中的鈉離子而形成了PDS，因為十二烷基硫酸鈉（sodium dodecylsulfate）遇到鉀離子後變成了十二烷基硫酸鉀 （potassium dodecylsulfate, PDS），而PDS是不溶水的，同時一個SDS分子平均結合兩個氨基酸，鉀鈉離子置換所產生的大量沉澱自然就將絕大部分蛋白質沉澱了。2 M的醋酸是為了中和NaOH。基因組DNA一旦發生斷裂，只要是50－100 kb大小的片斷，就沒有辦法再被 PDS共沉澱了，所以鹼處理的時間要短，而且不得激烈振盪，不然最後得到的質粒上總會有大量的基因組DNA混入，瓊脂糖電泳可以觀察到一條濃濃的總DNA條帶。75%酒精主要是為了清洗鹽份和抑制Dnase；同時溶液III的強酸性也是為了使DNA更好地結合在硅酸纖維膜上

質粒抽提步驟
Ⅰ.使用質粒提取試劑盒提取質粒時請參考具體試劑盒的操作說明。如Omega公司的E.Z.N.A.® Plasmid Mini Kit I, Q(capless) Spin（質粒提取盒）。

Ⅱ.鹼裂解手提法：此方法適用於小量質粒DNA的提取，提取的質粒DNA可直接用於酶切、PCR擴增、銀染序列分析。方法如下：

1：接1%含質粒的大腸桿菌細胞於2mlLB培養基。

2：37℃振盪培養過夜。

3：取1.5ml菌體於Ep管(離心管)，以4000rpm離心3min，棄上清液。

4：加0.lml溶液I（1%葡萄糖，50mM/LEDTApH8.0，25mM/LTris-HClpH8.0）充分混合。

5：加入0.2ml溶液II（0.2mM/LNaOH，1%SDS），輕輕翻轉混勻，置於冰浴5min.

6：加入0.15m1預冷溶液III（5mol/LKAc，pH4.8），輕輕翻轉混勻，置於冰浴5min.

7：以10，000rpm離心20min，取上清液於另一新Ep管

8：加入等體積的異戊醇，混勻後靜置10min.

9：以10，000rpm離心20min，棄上清。

10：用70%乙醇0.5ml洗滌一次，抽干所有液體。

11：待沉澱乾燥後，溶於50ulTE緩沖液中（或60℃溫育去離子水）

抽提竅門
1：加溶液II（裂解液）後，操作一定要溫和，劇烈混合會導致基因組DNA污染。

2：洗脫時60℃溫育（Ellution Buffer）洗脫緩沖液或去離子水效果更好。

3：若質粒提取含量低，可增加菌液樣或換用ArtMedia Plasmid Culture，其比LB培養基質粒得量高

4：菌體應徹底懸浮 ， 如果沒有徹底懸浮菌體，則殘留的菌體團塊在溶液 II 加入後，變成難以完全裂解的團塊。這個團塊在溶液 III 加入後，會有一部分蛋白質繼續存在於溶液中，成為蛋白質殘留的最大根源。

5：加入溶液 II 後，混勻，體系最好能立即變得清澈。體系如果變得清澈了，馬上加入溶液 III 中和。

6：中和的操作 ，在 1.5ml 離心管中加入溶液 III 後，先顛倒兩次，使管底朝上，用指頭彈擊管底數次，再顛倒混勻。效果非常好。

注意事項
降低RNA殘留的方法

RNA 的去除，首先是使用 RNase 消化。在溶液 I 中加入高濃度的 RNase A (100ug/ml)，或者用含 25ug RNase A/ml TE 溶解抽提好的質粒，都可以降低 RNA 殘留，但都不能徹底去除。幸運的是，RNA 的殘留並不影響酶切等最常用的用途。如果想徹底去除 RNA 殘留，可以用試劑盒，或者使用對 4 個鹼基都作用的 RNase。

降低gDNA殘留的方法

gDNA 的殘留問題，必須在抽提過程中解決，否則，就只能用膠回收方法處理了。gDNA 越大，越難於復性，也就越容易被去除；所以，一定要盡可能不打斷 gDNA。裂解體系越粘稠，gDNA 越容易被扯斷；操作手法越重，gDNA 也越容易被打斷。溫和操作，使用相對過剩的試劑，是降低 gDNA 殘留的最好方法。

降低蛋白質殘留的方法

蛋白質的去除，主要是靠不溶解的 K-SDS-蛋白質復合物的形成。雖然將中和後的體系置於 4C 一段時間，可以形成更多的該不溶復合物，從而使蛋白質殘留更少，但實踐證明這樣做並不是必須的，除非是大量抽提。只要加入溶液 I 後的懸浮，加入溶液 II 後的裂解及加入溶液 III 後的中和是均勻徹底的，蛋白質的殘留就應該在可以滿足實驗要求的水平；而只有溶液的用量足夠，甚至過剩，才能確保裂解和中和是徹底的。當然，試劑盒及苯酚的使用，是可以更進一步降低蛋白質的殘留的。

降低質粒Nick的方法

細菌收獲時間，菌株的選擇，抽提操作的劇烈程度是影響 Nick 的三個主要因素。細菌收獲過早，質粒還在復制過程中，Nick 的比例較高；過晚，細菌開始死亡，雜質會比較多。如果使用胞內酶含量很高的宿主菌，會出現較高比例的 Nick。加入溶液 II 及加入溶液 III 的混勻操作，也可以導致一些 Nick，但影響不會比前兩者大。

降低變性超螺旋的方法

理論上，用鹼裂解法抽提質粒，變性超螺旋的出現是不可避免的。之所以大家沒有非常在意，一是因為它的存在似乎對酶反應沒有任何影響，二是因為它的含量並不一定高到被用電泳觀察到。抽提使用相對過剩的溶液，在加入溶液 II 後，體系能在 1 分鍾內變澄清，再快速加入溶液 III，這樣基本上能將變性超螺旋的出現控制在電泳看不見的水平。 (變性超螺旋電泳時比正常超螺旋跑得快一點點。)

關於質粒多聚體

QIAGEN 提供了一個沒有進一步解釋的觀察：從有些宿主菌中抽提質粒 (pTZ19)，電泳能發現很多條帶；但使用單酶切後，仍然變成一條帶，大小正好是線性單質粒的大小。根據這一觀察，可以推理如下：那些大的條帶(質粒多聚體)是由完整的單質粒「粘」在一起形成的，而不是我的一條鏈與你的一條鏈復性在一起；第二，這種「粘」只是部分的，否則酶切會有問題；第三，這種「粘」是脆弱的，線性後的剛性足以打破它。如果是這樣，質粒多聚體的出現與質粒的結構及序列有關，可以不管它(也管不了)，因為它不影響酶切，或者說，即使質粒多聚體切不動，也不會影響太大。總之，碰到這種情況，不要簡單地認為有問題，而是應該一步一步往下做，但一定要做完一步，檢測一次，看一看結果與預期的吻合程度。

提高得率的方法

利用氯黴素抑制染色體的復制，而不抑制質粒的復制這一特點，在低拷貝質粒（如pUC19）的培養過程中添加氯黴素可以大大提高得率。

⑻ 關於質粒DNA的一些問題

書上說的不全對。
瓊脂糖電泳進行鑒定質粒DNA時，多數情況下你能看到三條帶，但千萬不要認為你看到的是超螺旋、線性和開環這三條帶。鹼法抽提得到質粒樣品中不含線性DNA，不信的話你用EcoRI來線性化質粒後再進行瓊脂糖電泳，就會看到線性質粒DNA的位置與這三條帶的位置不一樣。其實這三條帶以電泳速度的快慢而排序，分別是超螺旋、開環和復制中間體（即沒有復制完全的兩個質粒連在了一起）。

至於你的問題：
因為質粒也是需要復制的，所以細菌中肯定有你說的三種形態。要說三種形態的比例，那就要看細菌是否處於質粒復制活躍期了。

⑼ 質粒DNA提取和細胞基因組DNA提取的異同

不同點

一、提取方法不同

DNA提取主要是CTAB方法，其他的方法還有物理方式如玻璃珠法、超聲波法、研磨法、凍融法。化學方式如異硫氰酸胍法、鹼裂解法。生物方式：酶法。

質粒抽提方法即去除RNA，將質粒與細菌基因組DNA分開，去除蛋白質及其它雜質，以得到相對純凈的質粒。

二、提取原理不同

質粒DNA提取用到三種溶液以及硅酸纖維膜（超濾柱）。 溶液Ⅰ：50 mM葡萄糖 / 25 mMTris-HCl/ 10 mMEDTA，pH 8.0；溶液Ⅱ：0.2 N NaOH / 1%SDS； 溶液Ⅲ：3 M 醋酸鉀/ 2 M 醋酸/75%酒精。

細胞基因組DNA提取

保證核酸一級結構的完整性；核酸樣品中不應存在對酶有抑製作用的有機溶劑和過高濃度的金屬離子；其他生物大分子如蛋白質、多糖和脂類分子的污染應降低到最低程度；其他核酸分子，如RNA，也應盡量去除。

三、提取復雜程度不同

質粒DNA提取一般用沸水浴法和鹼裂解法，它主要是將細胞內的環狀質粒提取出來，一般需要用SDS裂解，RNA酶降解，然後過柱，再進行洗脫.過程比較簡單。

而基因組DNA提取則較為復雜，也需要用SDS裂解和RND酶降解，但降解時間較長，同時對有些革蘭氏陽性細菌還要進行溶菌酶處理，最後用氯仿-苯酚進行除蛋白，這一步重復進行多次，在用氯仿除去多餘的苯酚，用乙醇清洗烘乾後溶於TE緩沖液中。整個過程比提質粒更復雜，耗時也更長。

相同點

都是去除RNA、除蛋白質及其它雜質。

⑽ 質粒和DNA有什麼不同

質粒是一種可以獨立復制的DNA片段，通常以環狀的形式存在，同時有線性和超螺旋狀態，而DNA是脫氧核糖核酸的英文簡稱，是由核苷酸聚合而成的，其中基因就是DNA的一種，可以調控蛋白質的表達和生物機體功能！