超濾離心管和普通離心機轉速

1. 標准離心機轉速多少算高速離心機

8000以上。
按照轉速分類，離心機一般可以分為以下幾種：
普通離心機(低速)<8000r/min;
高速離心機8000
～30000r/rain;
超速離心機30000
～80000r/min;
超高速離心機>80000r/min。
通常情況下，醫用離心機屬低速離心機，轉速一般不超過5000r/min，用水平轉子就可以了，並且可以滿足大容量的需求。學校，科研單位等實驗室用離心機，一般需要高速離心機(大於5000r/min)，用小容量的角轉子。
實驗室在選擇離心機時，可以根據實驗目的和實驗需要，選擇不同容量、不同轉速、不同溫度控制的離心機。

2. 離心機的轉速分為幾種

1、 低速離心機，一般指最高轉速小於8000r/min即8000轉每分鍾；

2、常速離心機，一般指最高轉速小於15000r/min即15000轉每分鍾；

3、高速離心機，一般指最高轉速大於15000轉但小於30000轉每分鍾的，但也有一種界定認為高速離心機指最高轉速大於8000轉但小於30000轉每分鍾的；

4、超高速離心機一般指最高轉速大於30000轉每分鍾，對於某些特殊的離心機，其最高轉速甚至可以達到80000轉，但這種超高速離心機一般都是體積相對較大的落地式的，應用於一些特殊行業的，通常普通實驗室是用不到的。

(2)超濾離心管和普通離心機轉速擴展閱讀：

離心原理

當含有細小顆粒的懸浮液靜置不動時，由於重力場的作用使得懸浮的顆粒逐漸下沉。粒子越重，下沉越快，反之密度比液體小的粒子就會上浮。微粒在重力場下移動的速度與微粒的大小、形態和密度有關，並且又與重力場的強度及液體的粘度有關。象紅血球大小的顆粒，直徑為數微米，就可以在通常重力作用下觀察到它們的沉降過程。

此外，物質在介質中沉降時還伴隨有擴散現象。擴散是無條件的絕對的。擴散與物質的質量成反比，顆粒越小擴散越嚴重。而沉降是相對的，有條件的，要受到外力才能運動。沉降與物體重量成正比，顆粒越大沉降越快。

對小於幾微米的微粒如病毒或蛋白質等，它們在溶液中成膠體或半膠體狀態，僅僅利用重力是不可能觀察到沉降過程的。因為顆粒越小沉降越慢，而擴散現象則越嚴重。所以需要利用離心機產生強大的離心力，才能迫使這些微粒克服擴散產生沉降運動。

離心就是利用離心機轉子高速旋轉產生的強大的離心力，加快液體中顆粒的沉降速度，把樣品中不同沉降系數和浮力密度的物質分離開。

3. 15ml，10kd超濾管轉速要多大

1、選擇合適的超濾管，主要考慮MWCO和濃縮體積，最常見的是Ultra-15（10kD）。
通常應截版留分子量不應大於權目的蛋白分子量的1/3，比如目的蛋白分子量為35kDa，就可以選擇10kDa截留分子量的超濾管。
若目的蛋白分子量為10kD左右，則可以用截留分子量3kD的超濾管。認真閱讀使用說明書，注意超濾膜對各種化學物質的耐受程度有所不同，表格中有。

2、新買來的超濾是乾燥的，使用前加入MilliQ水，水量完全過膜，冰浴或冰箱里預冷幾分鍾。然後將水倒出，即可加入蛋白液，加入的多少，以不超過管頂的白線為准。操作要輕，加入蛋白液前，超濾管需要插在冰上預冷。

3、平衡。質量和重心二者都要達到平衡。注意轉速和加速度不可太快，否則直接損壞超濾膜。

注意，一定要等離心機達到目的轉速之後，方可離開
離心機，否則離心機出問題時，無法第一時間處理，後果不可預測！膜與轉軸的方向根據說明書調整（角轉離心機的情況是膜與軸垂直）。在實際使用中，一般轉速開的比說明書里的要低，這樣可以延長離心管的使用壽命。

4. 超濾離心管放一般的離心機能用么

般的離心機有兩種轉子,一種是吊籃式的轉子,一種是角轉子.當然兩種都可以用來轉超濾管濃縮,不過角轉子效率會差很多,就是你離心時間長但濃縮體積還是不大.吊籃轉子效率比較高一些.

5. 請問：對不同的物質離心的時候，離心機對應的轉速是不同的，這個轉速的大小是怎麼計算出來的 謝謝！

一般經驗上來講：固液分離較為簡單，密度差越小轉速越高。1000r/min就夠用了。
如果是液液分離，可以先採用重力沉降，篩分和旋液分離器等方式預先處理，以減少處理量，降低設備要求。
如果你知道分離所需的離心加速度，轉速就可以直接計算。
轉速=根號下(91*離心加速度/離心半徑)
離心加速度是多少G，就是多少乘以9.8。半徑的單位是米
有個離心機網，再有不解可以上論壇。裡面高手很多的。http://www.lxjw.net/

6. 離心管和離心超濾管

離心管就來是一個簡單的可自以承受高轉速壓力的管子，比如離一些樣品，分離出上清沉澱。
離心超濾管會有一個類似於內管和外管的兩個部分，內管中是帶有一定分子量的膜，當高速離心時，分子量比它小的就漏到下面的管子（即外管）中了，分子量比它大的就截留在上面（即內管中），就是超濾的原理。。。。常用於濃縮樣品。

7. 普通的離心機的轉速為多少每分鍾求解

不知道是不是所有的離心機都是那樣，但是廣州園大常速離心機Fr<3500，一般為600到1200，這種轉速較低，直徑較大。您可以參照一下。

8. 超濾離心管怎麼使用

蛋白濃縮和換Buffer通常使用的超濾管，常用Millipore的Amicon-Ultra-15超濾管（MWCO10kD）。也有其它型號的、不同體積大小和MWCO超濾管可選，視目的蛋白的分子量與濃縮前體積、濃縮目標體積而定。可重復使用。
1、選擇合適的超濾管，主要考慮MWCO和濃縮體積，通常應截留分子量不應大於目的蛋白分子量的1/3，比如目的蛋白分子量為35kDa，就可以選擇10kDa截留分子量的超濾管。若目的蛋白分子量為10kD左右，則可以用截留分子量3kD的超濾管。
2、新買來的超濾是乾燥的，使用前加入MilliQ水，水量完全過膜，冰浴或冰箱里預冷幾分鍾。然後將水倒出，即可加入蛋白液，加入的多少，以不超過管頂的白線為准。操作要輕，加入蛋白液前，超濾管需要插在冰上預冷。
3、平衡。質量和重心二者都要達到平衡。注意轉速和加速度不可太快，否則直接損壞超濾膜。開始離心超濾（離心機預冷至4度）。膜與轉軸的方向根據說明書調整（角轉離心機的情況是膜與軸垂直）。在實際使用中，一般轉速開的比說明書里的要低，這樣可以延長離心管的使用壽命。
4、當濃縮到剩下1ml時，【取50ul國產Bradford溶液，加入10ul流穿，看有沒變藍色，以此判斷超濾管是否漏掉蛋白。如果管漏了，將上層和流穿重新倒入新管中開始超濾。要精確判斷是否漏管，用5mg/ml的BSA離心10min，再取流穿，跑蛋白膠或Bradford粗測】，繼續加入剩下的蛋白液濃縮（在冰上操作，防止蛋白受熱），直到所有濃縮液都加完為止。離心過程中注意是否發生蛋白沉澱，導致堵管。若發生沉澱，要確定沉澱的具體原因，是蛋白濃度過高還是Buffer不合適；前者可用多根超濾管同時超濾，降低濃度的辦法解決，後者的方法是換不同的Buffer，直到蛋白不發生沉澱為止。
5、前面幾步用以濃縮蛋白，如果要換Buffer，在總蛋白液濃縮至1ml左右的時候，輕輕加入新的Buffer（經0.22um超濾膜超濾），再濃縮至1ml左右，連續三次，最後一次的濃縮終體積根據需要的蛋白濃度而定，一般不多於500ul，也有濃縮至200ul以內的情況。按照每次至少10倍左右的體積濃縮算，三次達到1000倍以上，基本上可以達到換buffer的目的。
6、取出最終蛋白濃縮液的操作在冰上操作，用黃槍頭（200ul）取，輕輕順著邊緣插入槍頭，輕輕吹打、混勻蛋白液，注意不要碰到超濾膜，然後吸取濃縮液，每次吸接近200ul，直到吸完。管底剩下的最後一點濃縮液不必吸取，否則難度太大，有可能損壞超濾膜。最後加入MilliQ水到超濾管中，沒過超濾膜，防止膜失水變干。
7、以下是處理超濾管，重復利用超濾管的步驟。
8、倒出超濾管里的水，用milliQ水輕輕潤洗幾次，【若管底有可見的蛋白沉澱，可以先加入水，然後用槍頭吹打，注意不要碰到膜，吹打至沉澱懸起，然後倒掉，不可用自來水猛沖】然後加入0.2M的NaOH溶液，室溫放置20min，期間平衡超濾管。再離心10min。倒出殘留的NaOH溶液，將管芯浸入MilliQ水的燒杯(1或2L)中,放置幾個小時,再換新的水,放置幾個小時，不斷稀釋NaOH濃度。50ml管和蓋子用自來水洗，內壁再用MilliQ水洗干凈。
9、取出浸沒的管芯，加至接近滿的MilliQ水，50ml管也加滿MilliQ水，將管芯慢慢放入50ml
離心管，排出部分水，然後蓋上蓋子，放4度保存，直到下次使用。一般來說，按照上述步驟和注意事項，每根管用三四年不會壞。

9. 離心機轉速設置為多少

離心機的轉速控制，一般都是變頻的，的確可以輕松改變。
但是，轉速，其實跟處理物料絕對有關。決定最終物料處理效率的其實簡單的歸集為G值，其實就是離心力的大小。這個值，跟物料，轉轂直徑，轉速的都有關系。不能簡單的就給您一個數值，這是不科學的。